《Science Advances:基于海葵Aiptasia的宿主-共生体相互作用研究》

  • 来源专题:中国科学院文献情报系统—海洋科技情报网
  • 编译者: liguiju
  • 发布时间:2023-04-03
  • 共生的刺胞动物,如珊瑚和海葵,在营养贫瘠的海洋环境中形成高生产力和生物多样性的珊瑚礁生态系统,这种现象被称为达尔文悖论。这一现象自达尔文首次提出以来,一直让科学家们着迷和困惑。这些生态系统的基础是珊瑚宿主动物和光合甲藻的共生关系,甲藻属于Symbiodiniaceae科,生活在宿主胃腔内衬细胞(称为“共生体”)的特殊泡泡里。宿主和甲藻连同多样的微生物组组成全生态系统的元生物体。藻类光合作用提供了固定的有机碳,用于能量和生物合成,并覆盖了大部分宿主的能量需求。然而,提供有机碳并不是赋予藻类内共生体的唯一重要功能。氮是珊瑚礁生态系统的主要生长限制因素之一,藻类被认为是氮吸收和循环的主要贡献者,因为它们具有高容量的氨吸收。然而,一些证据也表明宿主在氮同化中也起到了积极作用。
    光合固定碳和氮同化对于这些元生物体的生态系统和生产力至关重要。然而,固定碳如何从甲藻移动到各种宿主细胞,以及宿主和甲藻在氮同化和保护中的各自贡献等机制尚不清楚。揭示这些机制对于人们理解全生态系统的功能和生产力至关重要。在该研究中,研究人员使用海葵Aiptasia作为研究对象,详细研究了宿主—共生体营养相互作用。他们发现,在共生过程中,葡萄糖的增加可利用性和藻类的存在共同诱导了葡萄糖和氨离子转运蛋白的协同上调和重定位。这些分子反应对于支持共生体的功能和通过谷氨酰胺合成酶/谷氨酸合成酶介导的氨基酸生物合成的有机体氮同化至关重要。该研究结果揭示了这些生物中氮保存和循环分子机制的关键部分,这些机制使它们能够在氮贫瘠的海洋环境中茁壮成长。(王琳 编译)

  • 原文来源:https://www.science.org/doi/10.1126/sciadv.adf7108
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  • 《中国科学院海洋研究所研究揭示深海化能共生西伯达管虫的宿主-共生菌互作新机制》

    • 来源专题:中国科学院文献情报系统—海洋科技情报网
    • 编译者:熊萍
    • 发布时间:2024-10-14
    • 近日,中国科学院海洋研究所李超伦团队联合香港科技大学研究团队在《科学进展》期刊(Science advances)发表最新研究成果,揭示了深海化能共生西伯达管虫的宿主-共生菌互作新机制。 西伯达科管虫是热液、冷泉等深海化能生态系统独特物种,其消化系统完全退化,但在其体内的特殊共生组织——营养体内,管虫与伽马变形硫氧化菌建立细胞内共生关系:宿主管虫将硫化氢、氧气和二氧化碳等气体运输到营养体内供给共生菌,而共生菌则利用还原性气体的化学能固定生物质滋养宿主。这种简单的共生关系适应力强且十分高效,西伯达管虫通常能够快速生长并迅速成为化能生态系统中的优势物种之一。例如,著名的巨管虫(Riftia pachyptila)每年可生长超过85厘米,是已知生长速度最快的动物之一。这种非凡的生产力表明西伯达管虫共生体系高效的代谢过程,可能由宿主-共生菌双方共同进化的适应性机制驱动,但宿主-共生菌之间的互作及调控机制仍有待阐明。 为了深入研究西伯达管虫宿主-共生菌互作及调控机制,中国科学院海洋研究所与香港科技大学的联合研究团队采用了深海原位单细胞RNA测序(scRNA-seq)技术,研究了冷泉西伯达管虫Paraescarpia echinospica的营养体组织。 研究团队开发了适用于深海的单细胞原位固定液及动物样品固定系统,协同“发现”号远程线控潜水器(ROV)团队,在南海冷泉成功采集冷泉西伯达管虫P. echinospica生物样品,并随后利用FACS及单细胞测序技术,构建了P. echinospica营养体的单细胞图谱。 scRNA-seq分析揭示了管虫营养体内部精细的细胞分工与功能协同。研究发现,营养体内的不同细胞类型,包括外层被膜、血管内皮细胞和含菌细胞等,分别表达与化能合成气体运输、代谢物转运等功能相关的基因。这些细胞的协同作用在营养体小球中形成了由外向内的生化梯度,促进了化能合成底物从营养体外围向中心的传递。研究人员发现营养体内的含菌细胞(共生细胞)可以分为有氧和无氧两大类,分别分布在营养体小球的外圈和中央。这种空间分布格局表明,管虫在营养体内部建立了泾渭分明的有氧和无氧微环境。 有趣的是,对共生菌关键代谢途径的综合分析表明,共生菌的形态和代谢状态与其在宿主营养体小球内位置存在空间相关性。居住在富氧外围的含菌细胞中的共生菌形态较大(直径可达5-8微米),并进行自养碳固定生成有机质滋养宿主。相反,居住在缺氧中心的共生菌形态小(直径1-3微米)参与厌氧反硝化,帮助宿主氨废物。营养小球内的这种空间组织使养分生产和废物解毒同时高效进行。 本研究揭示了深海动物共生和环境适应的新机制,并为动物宿主-共生微生物之间的共生相互作用带来了新的见解。同时,本研究的工作流程为从单细胞水平解析深海动物的共生及环境适应分子机制提供了一种潜在的新范式。这种方法可能为非模式生物,特别是海洋动物的研究提供便利。李超伦研究员及香港科技大学吴若昊副教授、钱培元教授为论文共同通讯作者,海洋所王昊副研究员及香港科技大学肖红秀博士为论文共同第一作者。研究得到了鳌山科技创新项目、国家自然科学基金重点基金、广东省基础与应用基础研究重大项目课题、南方海洋科学与工程广东省实验室、香港特别行政区政府及Chau Hoi Shuen Foundation等机构和项目的联合资助。 相关论文: Hao Wang, Hongxiu Xiao, Buhan Feng, Yi Lan, Cheuk Wang Fung,? Huan Zhang,? Guoyong Yan, Chao Lian, Zhaoshan Zhong,? Jing Li, Minxiao Wang, Angela Ruohao Wu, Chaolun Li, Pei-Yuan Qian.? “Single-cell RNA-seq revealed distinct metabolic “micro-niches” and close host-symbiont interactions in deep-sea chemosynthetic tubeworm”, Science Advances 2024 DOI:10.1126/sciadv.adn3053 论文链接: https://www.science.org/doi/10.1126/sciadv.adn3053
  • 《IL-36γ在宿主防御结核病中的作用研究》

    • 来源专题:结核病防治
    • 编译者:李阳
    • 发布时间:2016-04-20
    • 结核病仍然是全球范围内的一大“杀手”,但对与其相关的保护性免疫和免疫致病机制的了解还不够充分。目前已知在宿主防御结核病过程中针对IL-1和IL-18通路的调控是通过炎症小体复合物来完成,但尚不清楚宿主防御机制中针对IL-36γ(IL-1家族中一个新近被发现的成员)的调控及其免疫学意义。基于此,来自德国马克斯普朗克感染生物学研究所的学者们合作探讨了IL-36γ在宿主防御结核病中的作用,其相关成果于2016年4月18日发表在The Journal of infectious diseases上。 研究发现,结核杆菌对宿主巨噬细胞的感染分两个阶段来诱导IL-36γ的产生:在第一阶段,微生物配体通过触发Toll样受体(TLR)和MyD88依赖性通路引起IL-36γ的分泌;在第二阶段,内源性IL-1β和IL-18进一步扩增IL-36γ的合成。此外,还发现IL-36γ对结核杆菌的控制是通过IL-36γ诱导的抗菌肽以及IL-36受体依赖性结核杆菌生长限制作用来实现。 综上所述,该研究首次探讨了结核感染对促炎细胞因子IL-36γ的诱导和调控。