《中国科学院海洋研究所研究揭示深海化能共生西伯达管虫的宿主-共生菌互作新机制》

  • 来源专题:中国科学院文献情报系统—海洋科技情报网
  • 编译者: 熊萍
  • 发布时间:2024-10-14
  • 近日,中国科学院海洋研究所李超伦团队联合香港科技大学研究团队在《科学进展》期刊(Science advances)发表最新研究成果,揭示了深海化能共生西伯达管虫的宿主-共生菌互作新机制。

    西伯达科管虫是热液、冷泉等深海化能生态系统独特物种,其消化系统完全退化,但在其体内的特殊共生组织——营养体内,管虫与伽马变形硫氧化菌建立细胞内共生关系:宿主管虫将硫化氢、氧气和二氧化碳等气体运输到营养体内供给共生菌,而共生菌则利用还原性气体的化学能固定生物质滋养宿主。这种简单的共生关系适应力强且十分高效,西伯达管虫通常能够快速生长并迅速成为化能生态系统中的优势物种之一。例如,著名的巨管虫(Riftia pachyptila)每年可生长超过85厘米,是已知生长速度最快的动物之一。这种非凡的生产力表明西伯达管虫共生体系高效的代谢过程,可能由宿主-共生菌双方共同进化的适应性机制驱动,但宿主-共生菌之间的互作及调控机制仍有待阐明。

    为了深入研究西伯达管虫宿主-共生菌互作及调控机制,中国科学院海洋研究所与香港科技大学的联合研究团队采用了深海原位单细胞RNA测序(scRNA-seq)技术,研究了冷泉西伯达管虫Paraescarpia echinospica的营养体组织。

    研究团队开发了适用于深海的单细胞原位固定液及动物样品固定系统,协同“发现”号远程线控潜水器(ROV)团队,在南海冷泉成功采集冷泉西伯达管虫P. echinospica生物样品,并随后利用FACS及单细胞测序技术,构建了P. echinospica营养体的单细胞图谱。

    scRNA-seq分析揭示了管虫营养体内部精细的细胞分工与功能协同。研究发现,营养体内的不同细胞类型,包括外层被膜、血管内皮细胞和含菌细胞等,分别表达与化能合成气体运输、代谢物转运等功能相关的基因。这些细胞的协同作用在营养体小球中形成了由外向内的生化梯度,促进了化能合成底物从营养体外围向中心的传递。研究人员发现营养体内的含菌细胞(共生细胞)可以分为有氧和无氧两大类,分别分布在营养体小球的外圈和中央。这种空间分布格局表明,管虫在营养体内部建立了泾渭分明的有氧和无氧微环境。

    有趣的是,对共生菌关键代谢途径的综合分析表明,共生菌的形态和代谢状态与其在宿主营养体小球内位置存在空间相关性。居住在富氧外围的含菌细胞中的共生菌形态较大(直径可达5-8微米),并进行自养碳固定生成有机质滋养宿主。相反,居住在缺氧中心的共生菌形态小(直径1-3微米)参与厌氧反硝化,帮助宿主氨废物。营养小球内的这种空间组织使养分生产和废物解毒同时高效进行。

    本研究揭示了深海动物共生和环境适应的新机制,并为动物宿主-共生微生物之间的共生相互作用带来了新的见解。同时,本研究的工作流程为从单细胞水平解析深海动物的共生及环境适应分子机制提供了一种潜在的新范式。这种方法可能为非模式生物,特别是海洋动物的研究提供便利。李超伦研究员及香港科技大学吴若昊副教授、钱培元教授为论文共同通讯作者,海洋所王昊副研究员及香港科技大学肖红秀博士为论文共同第一作者。研究得到了鳌山科技创新项目、国家自然科学基金重点基金、广东省基础与应用基础研究重大项目课题、南方海洋科学与工程广东省实验室、香港特别行政区政府及Chau Hoi Shuen Foundation等机构和项目的联合资助。

    相关论文:

    Hao Wang, Hongxiu Xiao, Buhan Feng, Yi Lan, Cheuk Wang Fung,? Huan Zhang,? Guoyong Yan, Chao Lian, Zhaoshan Zhong,? Jing Li, Minxiao Wang, Angela Ruohao Wu, Chaolun Li, Pei-Yuan Qian.? “Single-cell RNA-seq revealed distinct metabolic “micro-niches” and close host-symbiont interactions in deep-sea chemosynthetic tubeworm”, Science Advances 2024 DOI:10.1126/sciadv.adn3053

    论文链接: https://www.science.org/doi/10.1126/sciadv.adn3053

  • 原文来源:https://qdio.cas.cn/2019Ver/News/kyjz/202409/t20240918_7365715.html
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    • 近日,Cell子刊iScience在线发表了中国科学院海洋所深海中心李超伦课题组在深海无脊椎动物化能营养共生体的维持和互作机制研究方面的最新成果“Molecular analyses of the gill symbiosis of the bathymodiolin mussel Gigantidas platifrons”,揭示了平端深海偏顶蛤鰓丝组织中非含菌细胞、含菌细胞以及共生菌在维持化能营养共生体的“微生态位”的功能作用。 与化能菌形成共生体是无脊椎动物适应深海热液/冷泉特殊生境的重要生态策略。平端深海偏顶蛤是南海冷泉区最具代表性的无脊椎动物之一,与甲烷氧化菌建立共生关系。平端深海偏顶蛤的鳃丝是宿主细胞与共生菌建立和维持共生关系的场所。鳃丝由含菌细胞以及周边不含共生菌的纤毛细胞、粘液细胞及间质细胞等多种细胞组成,鳃丝组织的复杂性一直困扰着对宿主-共生菌互作机制的解析。 该研究依托海洋所“科学”号科考航次,通过胰蛋白酶降解的方式,富集含菌细胞,并通过比较转录组-宏转录组相结合的方式,对平端深海偏顶蛤鰓丝共生组织中的含菌细胞、非共生细胞及共生菌的基因表达模式进行了分析。研究发现,非共生部分可调节鳃丝的空间结构和运动,维持细胞生长,提供粘液免疫保护,发挥着重要的支持作用;细胞内共生体中的细菌向共生体提供代谢物,控制共生体的数量,并保护共生体免受噬菌体的感染;共生菌从宿主创造的理想环境中获益,并作为共生关系的受益者,致力于甲烷氧化和能量生产过程。平端深海偏顶蛤与共生菌可在组织、细胞和分子水平上协同互作,维持了高效、和谐的化学合成“微生态位”。 文章第一作者为海洋所王昊副研究员,该研究得到了科技部重点研发计划、海洋科学与技术试点国家实验室鳌山创新计划、中国科学院战略先导专项及“科学”号高端用户等项目支持。 文章信息:https://doi.org/10.1016/j.isci.2020.101894
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    • 编译者:liguiju
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    • 近日,国际生物学期刊eLife刊发了题为“Physiological and metabolic insights into the first cultured anaerobic representative of deep-sea Planctomycetes bacteria”的文章,报道了中国科学院海洋研究所孙超岷课题组关于深海难培养微生物-浮霉菌门(Planctomycetes)细菌独特的分裂方式和氮代谢特征的研究成果。该成果首次发现浮霉菌门的藻球菌纲细菌以类似出芽生殖的方式进行分裂,并且胞内存在类似高尔基体、内质网、囊泡等真核生物的细胞结构。此外,深海浮霉状菌可以在慢性噬菌体的辅助下,有效地代谢利用硝酸根离子和铵根离子,为了解深海微生物与病毒的互作关系提供了新的见解。 浮霉菌门细菌的细胞具有复杂的胞内膜结构,有些浮霉状菌的染色质被膜包围且紧缩,类似真核生物的细胞核;除此之外,也有一些其它的类似真核生物细胞器的结构,像“粗面内质网”、厌氧氨氧化体等,这在原核生物中是仅有的。浮霉菌门细菌广泛分布在地球上的各种生态系统中,尤其在深海多个生境(冷泉、热液、深渊、海山等)中的丰度都非常高,但很难被纯培养,尤其是厌氧菌株。孙超岷课题组利用新颖的富集分离策略从深海冷泉沉积物中分离获得了一株浮霉菌新种,并命名为Poriferisphaera heterotrophicis ZRK32,这是第一株获得纯培养的深海厌氧浮霉菌。结合生长试验和转录组学分析,研究人员发现N-乙酰氨基葡萄糖不会促进浮霉菌ZRK32菌株的生长,反而丰富的有机营养物可以有效促进它生长,这与之前所报道的好氧浮霉菌喜好N-乙酰氨基葡萄糖或寡营养的代谢特征有很大差异。值得一提的是,这株浮霉状菌是以类似于出芽生殖的独特方式进行分裂,胞内还有类似高尔基体、内质网、囊泡等真核生物的细胞器结构,为进一步研究其在原核生物向真核生物过渡中的进化机制提供了良好材料。 此外,研究人员还发现硝酸盐可以通过转化为氨进而生成谷氨酸进入三羧酸循环过程产生能量,最终促进浮霉菌的生长,而亚硝酸盐能抑制浮霉菌的生长。也就是说,硝酸盐或氨盐都是促进浮霉菌生长的必要因子,而亚硝酸盐则是浮霉菌生长的抑制因子。值得注意的是,在研究浮霉菌代谢含氮无机物的过程中,研究人员意外发现硝酸盐和铵可以诱导浮霉菌产生一种慢性噬菌体。这类噬菌体通过不裂解宿主细胞的方式复制,与宿主形成共生关系,而且这些噬菌体还可以通过自身编码辅助代谢基因(AMGs)参与浮霉状菌氮循环过程并生成谷氨酸。这与孙超岷团队之前的研究发现相一致:即慢性噬菌体可以辅助深海软壁菌代谢利用核酸获得能量(mBio, 2023)。这些研究结果表明在深海极端环境下噬菌体和宿主之间不仅仅只有敌对关系,还存在互惠共生关系,也揭示出深海难培养微生物仍存在着很多未知的独特生命过程。 中国科学院海洋研究所为论文第一完成单位,实验海洋生物学重点实验室郑日宽副研究员为第一作者,孙超岷研究员为通讯作者。研究得到了基金委重大研究计划集成项目、基金委创新群体项目、山东省“十四五”重点项目及中国科学院战略先导专项等项目联合资助。 相关论文: Rikuan Zheng, Chong Wang, Rui Liu, Ruining Cai, Chaomin Sun*. Physiological and metabolic insights into the first cultured anaerobic representative of deep-sea Planctomycetes bacteria. eLife, 2024, 12:RP89874. Doi:10.7554/eLife.89874. 论文链接:https://doi.org/10.7554/eLife.89874