《Leti重点介绍了GaN电力电子技术的进展》

  • 来源专题:集成电路
  • 编译者: Lightfeng
  • 发布时间:2020-12-27
  • 法国微/纳米技术研发中心CEA-Leti表示,其在第66届IEEE国际电子器件会议(IEDM 2020)上发表的两篇补充研究论文证实氮化镓(GaN)技术方法有望克服各种挑战。嵌入MOS栅极的先进GaN器件具有更优化的架构和性能,可以满足全球电源转换系统市场快速增长的需求。

    综合考虑,这两篇论文提供了RT Nanoelec框架下GaN MOS-c HEMT栅极堆叠的新颖理解。他们展示了GaN MOS叠层表征的复杂性,以及专业的报告分析和可靠的参数值。论文《GaN-on-Si-E型MOSc-HEMT中碳相关pBTI降解机理》研究了晶体管栅极正偏压时发生的正偏压温度不稳定性(pBTI)效应背后的物理机制,以确定这种效应的根本原因并将其最小化。已经证明在正的栅极应力下电压阈值(Vth)的不稳定性是由两个陷阱陷阱引起的。第一个与栅极氧化物的缺陷有关,第二个则与栅极界面的GaN中氮原子中碳原子的存在有关。

    在MOS技术中,BTI是一种常见的可靠性测试,Vth不稳定性的根本原因与氧化物缺陷有关,氧化物缺陷可由电子或空穴充电或放电,具体取决于器件类型(n / p-MOS)和偏置极性。就GaN MOS-c HEMT而言,在晶体管下方生长的外延结构非常复杂,并且远非均匀。

    这项研究还证实了CEA-Leti在IEDM 2019上的一篇论文的结论,该论文表明GaN-in-N[CN]中的碳通常作为深受主引入,以创建用于击穿电压管理的半绝缘GaN层,与常见的氧化物陷阱电荷一起,导致了部分BTI不稳定性。因此,外延结构是降低GaN功率器件不稳定性的重要因素。

    另一篇研究论文《GaN-on-Si MOS-c HEMT中的界面陷阱密度(Dit)提取的新颖见解》旨在表征氧化物/ GaN界面的电气质量,以了解CEA-Leti栅极堆叠的界面陷阱密度是否为GaN-on-Si MOS-c HEMT中的主要阈值电压(Vth)贡献者,并确认研发过程中开发的解决方案的性能。

    界面陷阱密度(Dit)可提取在氧化物/半导体界面处具有电活性的界面缺陷的密度,以及其在能量方面与半导体带隙之间的分布。重要的是,Vth直接与易于调整的物理参数(例如金属栅极功函数和半导体的掺杂)以及某些与缺陷相关的参数(例如氧化物和界面态密度的固定或移动电荷)直接相关。如果未正确钝化和处理界面,此密度会极大地影响Vth。

    在GaN MOS-c HEMT的情况下,对GaN进行干法刻蚀。氧化物沉积和这一积极的工艺步骤可能对未来的氧化物/ GaN界面产生巨大影响。因此,开发和优化基于MOS的GaN功率器件需要具有准确可靠的接口表征技术。

    论文的作者Vandendaele表示,CEA-Leti的下一步工作是扩大团队对GaN MOSc HEMT的栅堆叠优化的了解,以最大程度地降低Dit值,并将最佳的产品,工艺和表征方法转移给IRT PowerGaN研究所的合作伙伴。

    CEA-Leti表示,它将通过在外延、器件、无源元件,共集成和系统架构方面的进一步研究来遵循其GaN路线图,以开发GaN技术,该技术可使开关频率和功率密度达到硅的10倍,全部使用标准CMOS工艺来降低成本。

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    • 来源专题:集成电路
    • 编译者:shenxiang
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    • 来源专题:人类遗传资源和特殊生物资源流失
    • 编译者:yanyf@mail.las.ac.cn
    • 发布时间:2019-10-30
    • 精确编辑活细胞基因组的能力具有巨大的潜力,可以加快生命科学研究,改善生物技术甚至治疗人类疾病。 用于基因组编辑的方法-主要是锌指核酸酶和类似转录激活因子的效应器(TALE)核酸酶-已经存在了几年,但是在2013年,被首次设计的CRISPR-Cas9系统的效率,有效性和精度迅速使它们黯然失色。博德研究所(Broad Institute)和麻省理工学院(MIT)的张峰(Feng Zhang)利用其进行哺乳动物基因组编辑。 CRISPR系统 像锌指和TALE一样,CRISPR系统也是天然产物。然而,CRISPR-Cas在一个关键方面与锌指和TALE不同,这使其在基因组编辑应用中具有优势:而锌指和TALE通过直接的蛋白质-DNA相互作用与DNA结合,需要针对每个新靶点重新设计蛋白质DNA位点,CRISPR-Cas通过小的RNA可以实现靶标特异性,可以很容易地将其交换为靶向新位点的其他RNA。 在自然界中,CRISPR-Cas系统可帮助细菌防御攻击性病毒(称为噬菌体或噬菌体)。它们由两个组件组成,CRISPR(聚簇的,规则间隔的回文重复序列)阵列和Cas(与CRISPR相关的)蛋白。 CRISPR序列可阻止细菌从入侵的噬菌体复制而来的短片段DNA,从而保留了过去攻击它们的病毒的记忆。然后将这些序列转录为短RNA,将Cas蛋白引导至匹配的病毒序列。 Cas蛋白通过切割来破坏匹配的病毒DNA。自然界中存在许多不同类型的CRISPR-Cas系统,它们的组成各不相同。 CRISPR-Cas9系统仅使用一种蛋白质Cas9来发现并破坏目标DNA。在2015年,Zhang和同事成功地利用了另一个名为CRISPR-Cpf1的系统,它具有用于更简单,更精确的基因组工程的潜力。 工程CRISPR工具箱 2011年初,张峰刚刚在Broad大学和MIT成立了自己的研究小组,在那里他是McGovern脑科学研究所的研究员,并且是脑与认知科学和生物工程系的教职员工。在广泛会议的一次科学会议上了解了现有的CRISPR研究之后,他很快意识到具有单个RNA引导蛋白的系统可能会改变基因组编辑技术。他已经在研究DNA靶向方法,并曾作为哈佛的初级研究员帮助开发TALE系统。该系统可以靶向并激活哺乳动物基因组中的基因。 Zhang和他的团队专注于利用CRISPR-Cas9在人类细胞中使用。 2013年1月,他报告了在人类细胞中基于Cas9的基因组编辑的首次成功演示,该论文已成为被引用最多的CRISPR论文(Cong等,Science,2013)。哈佛大学乔治·丘奇实验室的研究人员在同一期《科学》上也报道了类似的发现(Mali等,《科学》,2013年)。 Zhang和Church的论文表明,Cas9可以靶向人类基因组中的特定位置,并在那里切割DNA。然后通过插入由研究人员提供的新的DNA片段修复被切割的DNA,从而基本上实现了人类基因组的“查找和替换”功能。 2015年9月,Zhang和合作伙伴介绍了另一种系统Cpf1,该系统似乎对研究和治疗具有重要意义。 Cpf1系统更简单,因为它仅需要一个RNA。 Cpf1酶也比标准SpCas9小,从而更易于传递到细胞和组织中。