《Mol Cell:揭示CRISPR/Cas9基因编辑为何有时会遭遇失败》

  • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
  • 编译者: hujm
  • 发布时间:2018-07-16
  • 在一项新的研究中,来自美国伊利诺伊大学芝加哥分校的研究人员首次描述了为什么CRISPR基因编辑有时无法发挥作用,以及如何让它更加高效地发挥作用。相关研究结果发表在2018年7月5日的Molecular Cell期刊上,论文标题为“Enhanced Bacterial Immunity and Mammalian Genome Editing via RNA-Polymerase-Mediated Dislodging of Cas9 from Double-Strand DNA Breaks”。

    CRISPR是一种基因编辑工具,它允许科学家们从DNA中切除不需要的基因或遗传物质,有时还允许添加所需的序列或基因。CRISPR使用一种被称作Cas9的酶,Cas9像剪刀一样切除不需要的DNA。一旦在要被去除的双链DNA的任一条链上进行切割,细胞就启动修复从而将被切割的那条DNA链的两端连接在一起,不然细胞就会死亡。

    在这项新的研究中,这些研究人员证实当利用CRISPR进行基因编辑遭遇失败(大约在15%的时间发生)时,这通常是由于Cas9蛋白持续地结合到DNA上,这会阻止DNA修复酶进入切割位点。

    论文通信作者、伊利诺伊大学芝加哥分校医学院生物化学与分子遗传学副教授Bradley Merrill说,在此之前,人们并不知道为何这个基因编辑过程会随机地遭遇失败。

    Merrill说,“我们发现,在Cas9表现差劲的位点上,它仍然与DNA链结合,从而阻止细胞启动修复过程。”他说,这种继续结合的Cas9也无法继续进行额外的DNA切割,从而限制了CRISPR的编辑效率。

    Merrill、伊利诺伊大学芝加哥分校研究生Ryan Clarke和他们的同事们也发现在RNA聚合酶不活跃的基因组位点上,Cas9可能也无法有效地发挥作用。

    进一步的研究表明引导Cas9仅结合到DNA双链中的一条链会促进Cas9与RNA聚合酶之间的相互作用,从而有助于将无法发挥作用的Cas9转化为一种高效的基因组编辑器。具体而言,他们发现在基因组编辑过程中,Cas9对DNA链的选择保持一致性会迫使RNA聚合酶与Cas9碰撞,从而将Cas9从DNA上撞下来。

    Clarke说,“令我感到震惊的是,仅选择一条DNA链而不是另一条DNA链对基因组编辑产生如此强大的影响。揭示这种现象背后的机制有助于我们更好地理解Cas9与基因组的相互作用如何导致某些编辑尝试失败,而且在设计基因组编辑实验时,我们能够从这种理解中获得益处。”

    Merrill说,这些研究发现是非常重要的,这是因为在基因组编辑过程中,Cas9和DNA链之间的相互作用已知是一个“限速步骤”。这意味着它是这个基因组编辑过程中最慢的部分;因此,这个步骤发生的变化最有可能影响基因组编辑的总体持续时间。

    Merrill说,“如果我们能够减少Cas9与DNA链之间的相互作用时间,这一点我们如今知道如何利用RNA聚合酶加以实现,那么我们就能够减少Cas9的使用量并限制暴露。这意味着我们更有可能限制不良反应或副作用,这对在未来开发出可能影响人类患者的疗法而言是至关重要的。”

  • 原文来源:https://linkinghub.elsevier.com/retrieve/pii/S1097276518304477
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    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2018-07-19
    • 在几天前的一项研究中,来自美国伊利诺伊大学芝加哥分校的研究人员发现在利用CRISPR/Cas9进行基因编辑遭遇失败(大约在15%的时间发生)时,这通常是由于Cas9蛋白持续地结合到DNA上,这会阻止DNA修复酶进入切割位点(详情参见生物新闻报道:Mol Cell:揭示CRISPR/Cas9基因编辑为何有时会遭遇失败)。 科学家们已将CRISPR基因编辑作为一种改变基因组的方法,但有些人提醒道,不想要的DNA变化可能因未检测到而被遗漏。 针对人胚胎干细胞的基因编辑实验揭示出CRISPR-Cas9系统的不精确性。图片来自Annie Cavanagh via Wellcome/CC BY NC。 根据一项新的研究,这种基因编辑工具能够导致基因组上的靶位点附近发生大片段DNA缺失和重排。这些变化能够干扰对实验结果的解释,并且可能使得设计基于CRISPR的疗法的努力复杂化。相关研究结果于2018年7月17日在线发表在Nature Biotechnology期刊上,论文标题为“Repair of double-strand breaks induced by CRISPR–Cas9 leads to large deletions and complex rearrangements”。 这一发现不仅与CRISPR而且也与其他的基因编辑系统的之前结果相一致(Nature Communications, 2017, doi:10.1038/ncomms15464)。美国沙克生物研究所生物工程师Patrick Hsu说,这些不想要的编辑是一个值得更多关注的问题。他指出,“我确实认为这一点在这个领域一直被低估。” CRISPR-Cas9基因编辑依赖于Cas9酶在特定的靶位点上切割DNA。细胞随后尝试利用DNA修复机制重新密封这种DNA断裂。这些机制并不总是完美地起作用,有时DNA片段会被删除或重排,或者不相关的DNA片段被整合到染色体中。 领导这项新研究的英国韦尔科姆基金会桑格研究所小鼠遗传学家Allan Bradley说,“细胞会尝试将DNA重新拼接在一起。但是,它并不知道哪些DNA片段彼此相邻。” 人们经常利用CRISPR产生小片段DNA缺失,希望这样能够破坏一个基因的功能。但是在检查CRISPR编辑时,Bradley和他的同事们发现了大片段DNA---通常长数千个碱基---的缺失和复杂的DNA序列重排,这些重排导致之前相隔遥远的DNA序列被拼接在一起。这种现象在他们测试的所有三种细胞类型---小鼠胚胎干细胞、小鼠造血祖细胞和一种人分化细胞系---中都很普遍。 质量控制 许多人使用一种扩增短片段DNA的方法来测试他们的编辑是否已经完成。但是美国布兰戴斯大学分子生物学家James Haber说,这种方法可能会错过更大的DNA片段缺失和重排。 Hsu指出,这些缺失和重排应当仅在依赖于DNA切割的基因编辑技术中发生,而在避免切割DNA的其他类型的CRISPR改进版本中不会发生。比如,一种被称作碱基编辑的方法使用一种改进的CRISPR系统在不切割DNA的情形下将一个DNA碱基转换为另一个碱基(Nature, doi:10.1038/nature.2016.19773)。其他的系统使用与其他的酶融合在一起的灭活Cas9来打开或关闭基因,或者靶向RNA(Nature, doi:10.1038/531156a)。 一些科学家已经在寻找更大的DNA片段缺失。位于美国马萨诸塞州剑桥市的eGenesis公司正在利用基因编辑对猪器官进行基因改造以便用于移植。该公司联合创始人兼首席科学官Luhan Yang说,这家公司的科学家们经常利用多种方法来寻找大片段DNA和小片段DNA缺失。 同样地,在另一家致力于开发基于CRISPR的疗法的公司Intellia那里,科学家们在小鼠肝脏基因编辑研究中一直在寻找大片段DNA缺失。Intellia公司高级副总裁Thomas Barnes说,到目前为止,他们没有发现任何大片段DNA缺失的证据。他说,这可能是因为他的团队研究的细胞不经常发生分裂。相比之下,Bradley及其同事们开展这项新的研究使用了活跃地发生分裂的细胞。 Haber说,总体而言,这些不想要的编辑是一个值得更多关注的问题,但这不应该阻止任何人使用CRISPR。他说,“这意味着当人们使用它时,他们需要开展更加充分的分析。了解您的突变是否与您认为的一样,这一点是非常重要的。”
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    • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2021-01-23
    • 在一系列针对实验室培养的细菌开展的实验中,来自美国约翰霍普金斯大学的研究人员发现了证据,表明广泛使用的基因切割系统CRISPR-Cas9还有另一种作用---作为CRISPR-Cas9基因的自我调节开关。它调低或调弱CRISPR-Cas9活性的作用,可能会帮助科学家们开发出用于研究目的的细胞基因工程新方法。相关研究结果于2021年1月8日在线发表在Cell期刊上,论文标题为“A natural single-guide RNA repurposes Cas9 to autoregulate CRISPR-Cas expression”。 CRISPR-Cas9于1987年首次在肠道细菌的基因组中被发现,它是一组天然存在但不寻常的基因,具有切割其他类型细胞中DNA序列的潜力,这种能力在25年后才得以实现。它在基因工程中的价值---在包括人体细胞在内的活细胞中诱导可编程的基因变化---迅速得到了人们的认可。它作为基因组“编辑器”在全球数千个实验室中得到广泛应用。 CRISPR是规律间隔性成簇短回文重复序列的简称。Cas9,指的是CRISPR相关蛋白9,是进行DNA切割的酶的名字。论文通讯作者、约翰霍普金斯大学医学院分子生物学与遗传学助理教授Joshua Modell博士说,细菌天然地使用CRISPR-Cas9来切割病毒或其他潜在有害的DNA并使这种威胁失效。Modell说,就这种作用而言,“CRISPR不仅是一种免疫系统,而且还是一种适应性免疫系统---它可以通过保留病毒的一小段DNA来记住以前遇到过的威胁,这类似于罪犯的面部照片。”这些面部照片随后被复制到“向导RNA(gRNA)”中,告诉Cas9切割什么。 科学家们长期以来一直致力于解开CRISPR-Cas9作用机制的精确步骤,以及它在细菌中的活性如何被调高或调低。这些研究人员在寻找激活或抑制酿脓链球菌CRISPR-Cas9基因切割系统的基因时,发现了这一系统如何运作的线索。 具体来说,这些研究人员在CRISPR-Cas9系统中发现了一个基因,当失活后,它会导致这种基因编辑系统在细菌中的活性急剧增加。这个基因的产物似乎是对Cas9进行重新编程,使其作为刹车(brake)起作用,而不是“剪刀”,以调低CRISPR系统的活性。 论文共同第一作者、Modell实验室研究生Rachael Workman说,“从免疫的角度来看,细菌需要提升CRISPR-Cas9的活性,以识别和摆脱细胞经历的威胁,但它们也需要将调低这种系统的活性,以避免自身免疫---当免疫系统错误地攻击细菌本身的成分时,这种情形就会发生。” 为了进一步确定这种“刹车”的特殊性,Modell及其研究团队的下一步是更好地了解失活基因(tracrRNA)的产物。RNA是由DNA转录而来,对执行DNA制造蛋白的“指令”至关重要。TracrRNA属于一个独特的不制造蛋白的RNA家族。相反,它们作为一种支架,使Cas9酶能够携带含有罪犯面部照片的gRNA,并在入侵的病毒中切割匹配的DNA序列。 TracrRNA有两种大小:长和短。大多数现代基因切割工具CRISPR-Cas9都使用短的tracrRNA形式。然而,Modell团队发现,这种失活的基因产物是长形式的tracrRNA,其功能一直完全未知。 长形式的tracrRNA和短形式的tracrRNA在结构上相似,共同点是能够与Cas9结合。短形式的tracrRNA也能与gRNA结合。然而,长形式的tracrRNA不需要与gRNA结合,这是因为它包含一个模拟gRNA的片段。Modell说,“本质上,长形式的tracrRNA结合了短形式的tracrRNA和gRNA的功能。” 此外,这些研究人员还发现,gRNA通常会寻找病毒DNA序列,而长形式的tracrRNA靶向CRISPR-Cas9系统本身。长形式的tracrRNA倾向于停靠在DNA上,而不是切割它。当这种情况发生在一个基因的特定区域时,它就会阻止该基因的表达,或者说阻止该基因成为功能性的基因。 为了证实这一点,这些研究人员通过基因工程手段改变了长形式的tracrRNA中某一区域的长度,使得tracrRNA看起来更像gRNA。他们发现,在改变了长形式的tracrRNA后,Cas9再次表现得更像一把剪刀。 其他实验表明,在实验室生长的细菌中,如果有大量的长形式tracrRNA,所有CRISPR相关基因的水平都非常低。但当从细菌中去除长形式tracrRNA时,CRISPR-Cas9基因的表达量却增加了百倍。 将缺乏长形式tracrRNA的细菌细胞在实验室中培养3天,并与含有长形式tracrRNA的类似培养细胞进行比较。实验结束时,没有长形式tracrRNA的细菌已经完全死亡,这说明长形式tracrRNA通常可以保护细胞免受CRISPR-Cas9活性非常高时发生的病变和死亡。 Workman说,“我们开始有这样的想法,即长形式tracrRNA抑制但并没有消除它自身的CRISPR相关活性。” 为了观察长形式的tracrRNA是否可以被重新编程以抑制其他细菌基因,这些研究人员改变了长形式tracrRNA的间隔序列区,让它停靠在一个产生绿色荧光的基因上。与含有正常的长形式tracrRNA的细菌相比,具有这种突变版本的长形式tracrRNA的细菌发出的绿色荧光更少,这表明长形式tracrRNA可以通过基因工程来调低其他的细菌基因。 另一个来自埃默里大学的研究团队已发现,在寄生的新凶手弗朗西丝菌(Francisella novicida)中,Cas9可作为CRISPR-Cas9区域外基因的调节开关起作用。在这项新的研究中,虽然CRISPR-Cas9系统作为一种基因切割工具被科学家们更广泛地使用,但是Modell团队的研究结果提供了证据表明这种调节开关除了控制CRISPR-Cas9系统外,还控制了其他基因。 这些研究人员还在约40%的链球菌属细菌中发现了长形式tracrRNA的遗传成分。Workman说,对不具备长形式tracrRNA的细菌菌株的进一步研究,将有可能揭示它们的CRISPR-Cas9系统是否完好无损,以及这些细菌可能调节CRISPR-Cas9系统的其他方式。 Modell说,这些实验所发现的调节能力,为设计新的或更好的CRISPR-Cas9工具提供了机会,以便调节基因活性。他说,“在基因编辑方案中,科学家们除了使用长形式的tracrRNA来抑制基因活性外,还可能希望切割特定的基因。”