《利用改进的CRISPR/Cas9系统校正微卫星重复扩增疾病中的RNA缺陷》

  • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
  • 编译者: huangcui
  • 发布时间:2017-12-18
  • 在此之前,CRISPR-Cas9基因编辑技术仅能够被用来操纵DNA。在2016年的一项研究中,美国加州大学圣地亚哥分校医学院的研究人员在一种被称作RNA靶向性Cas9(RNA-targeting Cas9, RCas9)的方法中改变这种技术的用途,利用它追踪活细胞中的RNA(Cell, doi: 10.1016/j.cell.2016.02.054)。在一项新的研究中,这些研究人员将RCas9又向前推进一步:他们利用这种技术校正导致微卫星重复扩增疾病(microsatellite repeat expansion diseases)的分子错误。相关研究结果于2017年8月10日在线发表在Cell期刊上,论文标题为“Elimination of Toxic Microsatellite Repeat Expansion RNA by RNA-Targeting Cas9”。微卫星重复扩增疾病包括1型肌强直性营养不良、2型肌强直性营养不良、最为常见的遗传性肌萎缩性脊髓侧索硬化症(ALS)和亨廷顿舞蹈病。

    论文通信作者、加州大学圣地亚哥分校医学院细胞与分子医学教授Gene Yeo博士说,“这是激动人心的,这是因为我们不仅靶向当前缺乏延缓病情恶化的疗法的疾病的根源,而且我们我们重新改造了这种CRISPR-Cas9系统,从而使得通过一种病毒载体将它运送到特定组织中成为可能。”

    在生物学中心法则中,编码在细胞核DNA中的基因先经过转录产生mRNA,随后mRNA进入细胞质中,在那里,它们经过翻译产生蛋白。

    微卫星重复扩增疾病是由于RNA序列发生错误的重复而产生的,这些重复对细胞是有毒性的,这部分上是因为它们阻止至关重要的蛋白产生。这些重复性RNA在细胞核或细胞质中聚集,形成病灶(foci)。

    在这项概念验证的研究中,Yeo团队在实验室在来自患者的细胞和细胞疾病模型中,利用RCas9清除了与微卫星重复扩增疾病相关联的重复性RNA。

    在正常情形下,CRISPR-Cas9的工作机制是:设计一种“向导RNA(gRNA)”,这种gRNA与一个特定的靶基因的序列相匹配。这种gRNA引导Cas9酶到基因组中的靶位点上,Cas9在那里进行切割。细胞不精确地修复DNA断裂,因而让这个基因失活,或者利用这个基因的正确版本替换切割位点附近的DNA片段。RCas9类似地发挥作用,但是gRNA引导Cas9到RNA分子上而不是到DNA上。

    这些研究人员在实验室针对导致微卫星重复扩增疾病的RNA测试了这种新的RCas9系统。RCas9清除了95%以上的与1型肌强直性营养不良、2型肌强直性营养不良、最为常见的ALS和亨廷顿舞蹈病相关的RNA病灶。这种方法也清除了95%的在实验室培养的患者肌强直性营养不良细胞中存在错误的重复性RNA。

    另一种衡量成功的指标在于MBNL1。MBNL1是一种在正常情形下结合到RNA上的蛋白,但是1型肌强直性营养不良中的RNA病灶阻止它结合到它的上百种天然的RNA靶标上。当这些研究人员采用RCas9时,他们在患者肌肉细胞中逆转了93%的存在功能障碍的RNA靶标,而且这些细胞最终类似于健康的对照细胞。

    Yeo解释道,尽管这项研究提供初步证据证实这种方法在实验室中有效果,但是在RCas9能够在患者中进行测试之前,还有很长的路要走。

    一种瓶颈是运送RCas9到患者细胞中的效率。非传染性腺相关病毒(AAV)经常用于基因疗法之中,但是它们太小而不能够运送Cas9到靶DNA上。Yeo团队通过剔除Cas9蛋白中进行DNA切割所必需的片段但保留RNA结合不可缺少的片段,构建出一种更小的Cas9版本。

    他说,“我们迄今为止并不知道的是这种运送RCas9到细胞中的病毒载体是否会引发免疫反应。在人体中测试这一点之前,我们需要在动物模型中进行测试,确定潜在的毒性和评估长期接触的安全性。”

    为此,Yeo和同事们成立一家被称作Locana的衍生公司来处理将RCas9从实验室转移到针对基于RNA的疾病(如微卫星重复扩增疾病)开展的临床试验所必需的临床前步骤。

  • 原文来源:http://www.cell.com/cell/fulltext/S0092-8674(17)30817-6
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  • 《Nat Med:利用CRISPR/Cas9恢复肌肉功能》

    • 来源专题:再生医学与健康研发动态监测
    • 编译者:malili
    • 发布时间:2017-07-26
    • 在一项新的研究中,研究人员利用CRISPR在小鼠体内成功地治疗一种被称作先天性肌营养不良1A型(congenital muscular dystrophy type 1A, MDC1A)的罕见疾病。这种疾病能够导致严重的肌肉萎缩和瘫痪。他们能够通过校正一种导致这种疾病的剪接位点突变恢复了这些小鼠的肌肉功能。相关研究结果于2017年7月17日在线发表在Nature Medicine期刊上,论文标题为“Correction of a splicing defect in a mouse model of congenital muscular dystrophy type 1A using a homology-directed-repair-independent mechanism”。 加拿大多伦多病童医院研究员Dwi Kemaladewi在一项声明中解释道,“我们利用CRISPR切割两个关键位点上的DNA,而不是插入已得到校正的DNA片段。这会导致基因的两个末端一起恢复原状,从而产生一个正常的剪接位点。” 通过靶向骨骼肌和外周神经,这些研究人员能够改善这些小鼠的运动功能和移动能力。Kemaladewi在一份新闻稿中说道,“这是比较重要的,这是因为开发治疗肌营养不良的策略主要集中在改善这些肌肉性能。专家们知道外周神经是较为重要的,但是骨骼肌被认为是导致MDC1A的元凶,而且传统上是开发治疗方案的重点。” 美国哈佛大学生物学家Amy Wagers(未参与这项研究)告诉《多伦多星报》,“我们在动物模型中观察到的基因校正强健性是非常鼓舞人心的。” Wagers团队和其他人已利用CRISPR修复患上另一种罕见的被称作杜兴氏肌肉营养不良(Duchenne muscular dystrophy, DMD)的肌肉疾病的成年小鼠中的蛋白缺乏(Science, doi:10.1126/science.aad5143)。Kemaladewi和同事们也治疗了这种疾病---在2015年的一项研究中,他们的团队利用这种基因编辑工具移除了来自一名DMD患者的细胞中的一种发生重复的基因,从而恢复了相关蛋白的功能(American Journal of Human Genetics, doi:10.1016/j.ajhg.2015.11.012)。 多伦多病童医院干细胞与发育生物学家Janet Rossant(未参与这项研究)告诉《多伦多星报》,“直说了吧,首次考虑在人体中对这些疾病进行基因校正是有可能的,尽管这仍然处于考虑阶段。” 参考资料: 1.Kemaladewi DU, Maino E, Hyatt E et al. Correction of a splicing defect in a mouse model of congenital muscular dystrophy type 1A using a homology-directed-repair-independent mechanism. Nature Medicine, Publication online: 2017 Jul 17, doi:10.1038/nm.4367 2.CRISPR Restores Muscle Function in Mice
  • 《基因魔剪CRISPR/Cas9新进展》

    • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2018-03-20
    • CRISPR/Cas系统是从原核生物中发现的一种防御外源性遗传物质入侵的自身免疫机制,主要分为三种类型:Type I、Type II和Type III。而常用的CRISPR/Cas9系统是由II型改造而来,具有核酸酶活性,并能够通过向导RNA的作用靶向性结合生物基因组任何区域的目的基因,进而实现对目标基因的编辑。该系统最早被开发并最成熟的是Streptococcus pyogenes Cas9 (SpCas9),它具有较高的切割活性和保真性,是目前研究最深入的Cas酶之一。它识别的序列需要临近3’端有一段序列,即PAM(protospacer adjacent motif)。经典的PAM是NGG,而非经典PAM序列是NAG(N指 A/T/C/G)【1,2】。 在哺乳动物细胞中,SpCas9对靶位点在PAM为NGG时编辑效率是NAG的15倍;而中国水稻研究所王克剑教授团队对水稻基因组进行编辑时,则发现SpCas9在NAG位点的编辑效率约为NGG位点的76.44%,且保真性更高【3】。笔者利用人类细胞对应的报告系统对16个不同的PAM序列进行筛选后发现,SpCas9在部分位点对PAM为NGA的有效切割效率分别是NGG、NAG位点的0.5倍和2倍【4】。这项研究显示野生型SpCas9在人类细胞中可以利用其他非经典的PAM,但是效率并不高,也提示挖掘适用范围更广的SpCas9是有可能的。 古诗云:“长江后浪推前浪,浮事新人换旧人。”同样,在CRISPR的“舞台”上更是新秀迭出。 2018年1月29日Nature Biotechnology 在线发表的文章A highly specific SpCas9 variant is identified by in vivo screening in yeast介绍了一种筛选SpCas9突变体的方法——酵母报告菌株筛选法。利用易错突变在SpCas9的REC3结构域处制造随机突变并构建突变体库,然后经酵母报告菌株(yACMO-off1–4)进行筛选并鉴别出较优突变体(图1)。研究者将筛选出的四个较优突变体进行组合突变,产生了最优突变体——evoCas9(evolved Cas9)。该突变体除了具有良好的靶向性和切割活性,它最突出的特点是超高的保真度,比之于野生型SpCas9提高了79倍【5】。鉴于此,evoCas9在基因编辑为基础的基因治疗方面将具有重要意义。 无独有偶,2018年2月28日Nature在线发表了Evolved Cas9 variants with broad PAM compatibility and high DNA specificity。在该项研究中,为了更快速获得理想的SpCas9突变体,David Liu团队使用了独门秘籍——PACE(phage-assisted continuous evolution)(图2,图3)。其实早在2011年,Nature 就刊登了David Liu 的另一篇文章A System for the continuous directed evolution of biomolecules,介绍了PACE定向进化技术【6】。该方法与以往在Cas酶编码基因序列中人为地制造突变,再利用原核/真核细胞进行功能筛选不同。PACE所使用的大肠杆菌含有诱导突变发生的质粒MP(mutagenesis)和激活后能表达PⅢ(噬菌体存活的必需基因)的质粒AP(accessory plasmid)。研究者们把需要突变的Cas酶蛋白编码基因序列放进噬菌体基因组,转染宿主大肠杆菌。PACE利用噬菌体繁殖周期短的特点,对Cas酶进行大批量、持续性的突变并定向筛选噬菌体。这项PACE技术通过把生物分子的实验室进化和噬菌体的生命周期结合在一起,一周内就能够实现成百上千次的传代变异,在诱变效率上比传统方法提高了100倍。 在PACE技术的助攻下,突变体CRISPR/xCas9 3.7的出现,如雨后春雷,给基因编辑的应用发展带来了历史性的变革。比之于SpCas9,由SpCas9进化而来的xCas9 3.7有着更多的潜力。第一,xCas9 3.7具有更灵活的PAM选择性,能识别更大范围的PAM序列,包括NGG、NG、GAA和GAT;第二,它具有更优的靶向转录激活性和更强的切割基因的能力;第三,新构建单碱基编辑器xCas9(3.7)–BE3能够对致病性突变位点进行C?G→T?A和A?T→G?C的碱基替换,其效率分别高达73%和71%,明显优于SpCas9–BE3;第四,xCas9 3.7表现出极强的特异性,在PAM为NGG的EMX1基因靶位点处甚至没有脱靶。但令人困惑不解的是,xCas9 3.7的PAM序列识别灵活性、酶活性和保真性同时得到优化的现象突破了以往三者之间存在某种制衡的概念。目前这项工作仍然留下了不少需要回答的问题。另外,文献里报道的这些突变体(包括之前报道的基于结构为基础的突变体,如eCas9)平行比较实验也需要进行,如此可让大家了解这些工具,更好地选择最合适的工具。 实现高效的单碱基编辑一直是研究者们孜孜以求的目标,David Liu实验室在2017年报道过一种应用于哺乳动物细胞新型的腺嘌呤碱基编辑器ABE,借此编辑器实现A?T→G?C的转变【7】,当然其编辑效率远低于xCas9(3.7)–BE3。而中国科学院上海植物逆境生物学研究中心朱健康研究组在水稻中开发了一种新的腺嘌呤碱基编辑器ABEP2,其识别靶位点依赖于SaCas9(PAM序列NNGRRT),能够对水稻基因组的多个目标基因位点同时进行高效的碱基替换,甚至某些位点的编辑效率达61.3%,而且ABEP2精确性也很高【8】。总之,单碱基编辑器对精准编辑目的基因的研究意义非凡,就目前而言xCas9(3.7)–BE3无疑是 “利器”。 随着不同国家、不同地域的研究者们在CRISPR领域孜孜探索,人类基因组编辑技术的发展日新月异,新的方法和工具层出不穷。我们希望研究者们能够解析xCas9 3.7活性、保真性、PAM序列灵活性三者能够同时得到优化的机制,相信在此基础上,会有更快速、简便、高效、精准的基因编辑技术出现,被更广泛应用于疾病诊疗上、动植物育种等方面。但是,现有的技术水平距离人类基因编辑的需求仍有一定的距离,而xCas9 3.7(由SpCas9进化而来)的出现犹如利刃出鞘,将会极大地促进基因组编辑领域的进程。 这里需要提及的是,多种各具特色的Cas9中,在体内有优势的是SaCas9 (staphylococcus aureus Cas9)。2015年张峰实验室首先确定了SaCas9在哺乳动物细胞中的基因编辑作用,并对晶体结构进行了详细的分析。它的基因长度为3300bp,比SpCas9减少了约25%,这有助于SaCas9被载入腺相关病毒(AAV),增加了基因治疗应用的潜力;它识别的PAM是NNGRRT(N指A、T、C、G;R指A、G),在切割活性和靶向精准度上的表现均不输于SpCas9【9,10】。笔者实验室建立了双报告系统来评估基因组编辑工具的活性和PAM【11】,分别检测SpCas9、SaCas9和FnCpf1在不同位点上的基因组编辑活性,经过多重比较得出结论——SaCas9拥有比SpCas9和FnCpf1更高的活性【12】。因此,SaCas9凭借其分子量小和活性高的特点,在基因编辑应用中占据优势,更为简便高效。关于SaCas9的工程化改造可能对于基因组编辑为基础的临床治疗有重大意义。 在功能基因组学上,CRISPR家族新成员Cpf1因为能够同时完成多个基因的编辑,所以优势很明显【13】。国际上较为广泛采用的AsCpfl和LbCpfl对PAM序列有较为苛刻的要求(TTTN),极大程度上限制了Cpfl在实际应用中的靶位点的选择【14,15】。为了增加Cpf1靶序列的选择范围,笔者发现FnCpf1——其识别的PAM序列更加灵活(KYTV,K为G/T,Y为T/C,V为A/C/G),在人类细胞中具有较高的基因组编辑活性,这些为人类(含其他哺乳动物)基因组编辑提供了更多的工具【16】。如果能够进一步提高其保真性和活性,可能对于功能基因组学研究和临床疾病治疗非常有意义。另外,Cpf1家族对应的CrRNA较短,故而在工业化合成CrRNA方面更有优势。 综合上述,虽然xCas9 3.7的发现将让人类具有更加“锋利”和“通用性更强”的基因组编辑剪刀,但是它可能仍然无法做到基因组工具中“一统天下”,新的工具仍然需要研发和优化,从而实现“人定胜天”。