《如何利用CRISPR基因编辑技术改良机体白细胞来有效抵御癌症?》

  • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
  • 编译者: hujm
  • 发布时间:2019-11-29
  • 日前在美国,研究人员首次利用基因编辑工具来治疗3名晚期癌症患者,同时1期临床试验结果显现出了很大的希望,截止到目前为止,治疗似乎是安全的,而且有更多的结果有望很快发布。为了开发出了一种安全高效的癌症治疗方法,来自宾夕法尼亚大学等机构的科学家们通过研究开发出了一种先进的免疫疗法,在治疗过程中,研究者将患者自身的免疫细胞从其体内移除,随后对这些免疫细胞进行“训练”来使其能够识别特定的癌细胞,最后再将这些细胞注射回患者体内,这样其就能有效摧毁患者体内繁殖的癌细胞了。

    并不像化疗或放疗(其能直接杀灭癌细胞),免疫疗法能够激活患者体内的免疫细胞使其重新发挥作用,研究人员利用名为CRISPR的基因编辑工具来改变免疫细胞,使其能够重新锁定并杀灭癌细胞,利用这种技术,研究人员就能够开发出副作用较小的高效免疫疗法。笔者就是一名药剂学家和生物分子工程师,其非常感兴趣研究新型疗法的开发,笔者的实验室重点关注与编辑基因编辑器,尤其是,研究人员开发了一种基于CRISPR的基因编辑器,其能更好地对癌症和其它疾病进行诊断和治疗,研究人员能将化学、生物学、纳米技术相结合,更高效、更精确地设计、控制和提供基因编辑工具。

    训练免疫细胞使其能够寻找并杀灭癌症

    在癌症药物试验中制造杀灭肿瘤细胞的第一步就是从癌症患者的血液中分离T细胞(一种能够抵御病原体和癌细胞的白细胞),这项研究中,研究人员招募了2名患有晚期多发性骨髓瘤和1名患有粘液样圆形细胞脂肪肉瘤(myxoid/round cell liposarcoma)的患者参与到研究中。为了在不损伤正常细胞的情况下武装T细胞并增强其抗癌能力,研究人员对T细胞进行了改造,使其缺失了三个基因并增加了一个基因,随后再将改造过的T细胞注回癌症患者体内。

    其中缺失的两个基因能够编码T细胞受体,该受体是T细胞表面的特殊蛋白,其能识别并结合癌细胞上的抗原分子;当这些工程化的T细胞结合这些抗原时,其就能攻击并直接杀灭癌细胞;但问题是,单个T细胞能够识别机体内多种不同的抗原,这或许就会降低其寻找并攻击癌细胞的效率,通过消除这两个基因后,T细胞就不太可能会攻击错误的靶点或宿主了,这种现象称之为自身免疫。

    此外,研究人员还破坏了第三种基因,即程序性细胞死亡蛋白1(programmed cell death protein 1),其能有效减缓机体的免疫反应,破坏程序性细胞死亡蛋白1能够改善T细胞的效率。转化这些细胞的最后一步就是添加一种基因,其能产生新型的T细胞受体,该受体能够识别并抓住癌细胞上一种名为NY-ESO-1的特殊标志物,随着上述三个基因被剔除及一个基因的添加,T细胞就能够做好有效抵御癌症的准备。

    CRISPR在临床试验中处于什么位置?

    那么研究人员如何对T细胞进行编辑呢?他们利用CRISPR/Cas9基因编辑技术进行研究,该技术能利用两个组分来发挥作用,即导向CRISPR分子能寻找并结合靶向基因位点,Cas9能够切割DNA最终使基因失活;随后研究者利用电穿孔技术(该技术能在细胞膜上产生临时孔),从而将Cas9蛋白与靶向分子(靶向三个基因)传递给数百万个T细胞。

    当利用CRISPR干扰这三个基因的功能后,研究者利用一种安全失活的病毒将另外一个基因运输到T细胞中,使其能够识别癌症特异性标志物NY-ESO-1,移除数百万个细胞中这些基因的功能,并促进T细胞在体外培养皿中繁殖成数十亿个细胞,这可能需要几天到几周的时间。在将CRISPR修饰的T细胞注射到患者体内的前四天,研究热暖给予三位患者每人注射了几剂化疗药物来剔除其体内存在的白细胞。最终,大约有1亿/公斤个改良的T细胞被注射到了患者体内。

    CRISPR未来的潜力

    当注射了T细胞后,研究人员在最初28天里对患者进行持续监测,随后每月进行随访,持续六个月,此后研究者每三个月对患者进行检测,观察其机体出现的不良反应,比如免疫反应等;这种T细胞疗法常常会带来多种副作用,包括发烧、肌肉疼痛、头痛、意识错乱、癫痫发作、低血压、出血性疾病和多器官功能障碍等,目前研究人员并未在任何患者机体中发现毒性作用的迹象。

    但第一位晚期多发性骨髓瘤患者在60天后仍然会继续出现肿瘤,尽管对于该患者而言治疗似乎并没有那么成功,但研究者所进行的1期临床试验主要是为了测试疗法的安全性,目前研究者并未报告任何出现出现毒性表现。研究者使用串联CT扫描对第二位晚期粘液样圆形细胞脂肪肉瘤患者进行监测,该患者在治疗90天后情况比较稳定;第三位多发性骨髓瘤患者近期才开始试验,目前并没有结果;研究者表示,这种基于CRISPR基因编辑技术所产生新型疗法对于癌症患者治疗并不会带来严重的毒性作用,这或许是后期研究人员进一步向临床方向研究努力的重要一步。

  • 原文来源:http://news.bioon.com/article/6747243.html
相关报告
  • 《CRISPR-Cas9技术编辑的CAR-T细胞或能增强机体抵御血液癌症的潜力》

    • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2020-12-21
    • 近日,在2020年第62届美国血液学会年会(ASH)上,来自宾夕法尼亚大学的科学家们展示了他们最新的临床前研究结果,他们发现,利用CRISPR/Cas9技术敲除CAR-T细胞上能抑制T细胞激活的特殊蛋白或能增强工程化T细胞清除血液癌症的能力。研究人员敲除了CAR-T细胞上名为CD5的基因,随后将其输注回携带T细胞和B细胞白血病/淋巴瘤的小鼠体内,CD5基因能编码T细胞表面的CD5蛋白,而且还会抑制其激活。相比输注了非编辑CAR-T细胞的小鼠而言,输注了CD5被剔除的CAR-T细胞的小鼠机体外周血中的T细胞增殖水平较高,而且肿瘤尺寸发生了明显下降,且小鼠有更好的生存结局。 CRISPR技术能帮助科学家们锁定并编辑任何不需要的基因,以癌症为例,该技术就能通过剔除T细胞中的特殊基因来帮其更好地抵御肿瘤,这种方法与CAR-T细胞疗法密切相关,即研究人员通过收集患者机体自身的T细胞,对其进行工程化修饰表达新型受体从而寻找并攻击癌细胞。医学博士Marco Ruella说道,我们通过研究首次表明,我们可以成功利用CRISPR/Cas9技术来敲除CAR-T细胞表面的CD5,从而增强其攻击癌症的能力,在多种癌症模型中,编辑和非编辑CAR-T细胞之间的差异非常惊人。 研究人员首次在T细胞白血病模型中检测了这种新方法,抗CD5的CAR-T细胞能被遗传工程化修饰来寻找恶性T细胞上的CD5并对其发起攻击;由于CD5在正常T细胞中也会表达,随后研究人员从CAR-T细胞对CD5进行了移除,这样就能避免对其它CAR-T细胞的杀灭效应,从而就能潜在释放CAR-T细胞的激活,否则就会被这些细胞上CD5的存在所抑制。 实际上,在体内和体外实验中,CD5被剔除的抗CD5 CAR-T细胞要比CD5没有被剔除的CAR-T细胞的效力更强,而且有超过50%的小鼠在长期的实验中得到了治愈。为了检测CD5的剔除是否会增加靶向作用抗原而不是CD5的CAR-T细胞的抗肿瘤效应,随后研究人员在CTL019 CAR-T细胞对抗CD19+ B细胞白血病的环境下进行了证实,值得注意的是,同样在该模型中,CD5的敲除会明显增强CTL019 CAR-T细胞的抗肿瘤效率,同时还会让大部分小鼠的疾病完全缓解期延长。 在报告会当天的另一项演讲中,研究人员回顾了对8000多份患者肿瘤活组织样本的基因组数据分析结果,其研究了这些样本中CD5的水平,结果发现其与患者的预后密切相关,在大多数癌细胞类型中,T细胞中表达的CD5越少,患者的预后越好,因此机体T细胞中CD5的水平就显得尤为重要了。相关研究结果有望帮助科学家们后期进行相关的临床试验来探索如何将CAR-T细胞疗法与CRISPR/Cas9基因编辑技术相结合来改善当前以及开发新型的细胞疗法。 诸如研究人员开发的新型CAR-T细胞疗法或能用于儿童和成人血液癌症患者,同时也能在复发或难治性B细胞急性淋巴细胞白血病或非霍奇金淋巴瘤患者机体中诱发出戏剧性的反应。然而,很多患者并不会产生反应或者最终会出现疾病复发的情况。更重要的是,CAR-T细胞疗法并不能在多种血液恶性肿瘤的治疗中发挥有效的作用,比如T细胞淋巴瘤和白血病等,因为血液癌症会频繁表达CD5。CD5会在大部分慢性淋巴细胞白血病和套细胞淋巴瘤患者机体中表达,而且还会在大约20%的急性髓性白血病患者机体中表达。 目前能增强CAR-T细胞疗法的很多方法都涉及到能解决T细胞耗竭的疗法,尤其是PD-L1/PD-1轴。而发表此次演讲的研究人员的策略却并不同,其目标在于在T细胞激活早期阶段进行干预,从而提供机会来增加肿瘤微环境中T细胞的功能。研究者Carl June说道,从长远来看,这或许代表了一种更为普遍的策略,从而会增强CAR-T细胞的抗肿瘤效应;我们期待在下一阶段的工作中以这些令人鼓舞的发现为基础进行更为深入的研究。最后研究者表示,调查CD5剔除的CAR-T细胞疗法的1期临床试验将会与2021年早些时候开始。
  • 《我国科学家利用CRISPR基因编辑技术修正癌变基因》

    • 来源专题:中国科学院文献情报生命健康领域集成服务门户
    • 编译者:李丹丹
    • 发布时间:2020-03-21
    • 2020年2月17日,浙江大学转化医学研究院吕志民团队联合中国科学院生物物理研究所李新建团队在Nature Cell Biology在线发表了题为“Programmable base editing of mutated TERT promoter inhibits brain tumour growth ”的研究论文。该研究使用腺相关病毒(Adeno-associated virus, AAV)作为载体表达拥有腺嘌呤脱氨酶活性的空肠弯曲菌(Campylobacter jejuni)Cas9融合蛋白以及对应的单向导RNA(sgRNA),实现精准修正恶性胶质瘤细胞端粒酶基因启动子区域的致癌突变,以抑制肿瘤细胞生长。 该研究使用腺相关病毒作为碱基编辑器CjABE的表达载体,精准修正胶质瘤细胞端粒酶基因启动子区域的致癌突变,从而减少肿瘤细胞中TERT基因的转录和蛋白表达,抑制其分裂,诱导恶性胶质瘤细胞的衰老及凋亡。原位注射表达CjABE的腺相关病毒能够有效抑制小鼠移植瘤的生长并延长荷瘤小鼠的生存时间。该研究开创性地利用基因编辑以修正癌变基因,为癌症治疗提供了崭新的思路和方法,并揭示了端粒酶基因启动子区域突变是肿瘤精准治疗的靶点。a