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《一种通用型CAR-T细胞及其制备方法与应用 [发明]》

  • 来源专题：转基因生物新品种培育
  • 编译者： 姜丽华
  • 发布时间：2023-03-08
  •       申请号：CN202211252414.4

          申请日：2022.10.13

          国家/省市：31(上海)

          公开号：CN115747166A

          公开日：2023.03.07

          授权公告号：

          授权公告日：无

          主分类号：C12N5/10  

          分类号：C12N5/10;C12N15/12;C12N15/62;C12N15/867;A61K39/00;A61P35/00

          申请人：上海怡豪生物科技有限公司  

          申请人地址：200231 上海市徐汇区银都路218号1幢1C楼4层

          发明人：田晓丽  刘国迪  顾章杰  

          当前权利人：上海怡豪生物科技有限公司  

           代理人：秦亚群;郑纯

           代理机构：北京清大紫荆知识产权代理有限公司 11718

            范畴分类：18H

           当前状态：审中

            摘要:

           本发明提供了一种通用型CAR?T细胞，所述通用型CAR?T细胞中表达针对靶细胞表面抗原的嵌合抗原受体和人源TCR抑制因子，其中，所述人源TCR抑制因子源于人源CD3ζ基因，所述人源TCR抑制因子的核苷酸序列如SEQIDNO.7所示。本发明还提供其相应的载体、CAR?T细胞的制备方法、药物组合物和制备用途。本发明基于所述人源的过表达的TCR抑制因子构建了通用型CAR?T，无需基因编辑步骤。

                   


  • 原文来源：https://cprs.patentstar.com.cn/Search/Detail?ANE=6CCA8IAA9IBC8GAA9BHA9FEB9BHB9BIF9ICD9FFF9FGDDIIA
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    • 编译者：hujm
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    • 各有关单位： 为适应我国CAR-T细胞治疗产业发展需要，加强CAR-T细胞制剂制备质量管理，促进行业自律，我会组织协会相关分支机构、业内骨干企业及专家参照《药品生产质量管理规范》（GMP）等相关规定和指导原则，经过多次研讨，起草了《嵌合抗原受体修饰T细胞（CAR-T细胞）制剂制备质量管理规范》。经协会标准工作专家委员会审定，并完成了公示程序。现将《嵌合抗原受体修饰T细胞（CAR-T细胞）制剂制备质量管理规范》予以发布，并自发布之日起施行。 中国医药生物技术协会 2018年9月7日 目次 前言 引言 1范围 2规范性引用文件 3术语和定义 4基本原则 4.1　总体要求 4.2　人员 4.3　物料 4.4　设施和设备 5载体制备 5.1质粒制备 5.2非病毒载体制备 5.3病毒载体制备 6CAR-T细胞制备及质量控制 6.1　T细胞的采集和分离 6.2　CAR-T细胞制备 6.3　CAR-T细胞制剂的质量控制 6.4　CAR-T细胞冻存、运输与复苏 6.5　CAR-T细胞制剂的放行 7追溯 8保密 参考文献 前言 本标准按照GB/T 1.1—2009《标准化工作导则 第1部分：标准的结构和编写》给出的规则起草。 请注意本文件的某些内容可能涉及专利。本文件的发布机构不承担识别这些专利的责任。 本标准由中国医药生物技术协会制定，由中国医药生物技术协会实施。 本标准起草单位：中国医药生物技术协会医药生物技术临床应用专业委员会、天津医科大学肿瘤医院、北京博仁医院、安徽未名细胞治疗有限公司。 本标准主要起草人：任秀宝、孙倩、童春容、刘振云、孙艳、王伟、郝希山。 本标准为首次发布。 引言 近年来，免疫治疗经历了一系列突飞猛进的发展，以特异性过继免疫细胞疗法及免疫检查点抗体疗法为代表的新型免疫治疗技术因其在临床研究中取得的显着疗效而成为学术界和产业界共同关注的焦点。其中，嵌合抗原受体T细胞免疫疗法（Chimeric Antigen Receptor T-Cell Immunotherapy，CAR-T疗法）因其在白血病、淋巴瘤、多发性骨髓瘤等病种的治疗中展现出显着的治疗效果而成为国内外研究的热点。随着我国对CAR-T技术的研究不断深入，国内企业的积极布局和产业链的延伸，我国的CAR-T细胞治疗技术也在紧随国际趋势的发展。 遵循《药品生产质量管理规范》（GMP）是CAR-T细胞制剂制备的原则要求。此前，中国医药生物技术协会已经制定了《免疫细胞制剂制备质量管理自律规范》，帮助机构在免疫细胞制剂制备过程中避免污染、交叉污染、混淆及差错，最大限度地保证免疫细胞制剂的安全性、生物学效应。但CAR-T细胞作为一类特殊的免疫细胞，其制备和质量控制具有特殊性。为了适应我国CAR-T细胞治疗产业的需要，加强CAR-T细胞治疗的质量管理，规范细胞制备过程，保证CAR-T细胞制剂在临床研究和应用时的质量，促进国内外同行间的交流，中国医药生物技术协会在已有《免疫细胞制剂制备质量管理自律规范》的基础上，根据CAR-T细胞的特殊性，制定《CAR-T细胞制剂制备质量管理规范》。 CAR-T细胞制剂制备过程中涉及到的人员、设备、样品储存与运输、标识与追溯系统等其他要求，应参照中国医药生物技术协会制定的《免疫细胞制剂制备质量管理自律规范》执行。 嵌合抗原受体修饰T细胞（CAR-T细胞） 制剂制备质量管理规范 1　范围 1.1　本标准规定了CAR-T细胞制剂制备机构在制备过程中包括从载体制备、细胞采集以及细胞转导/转染、扩增、收集、冻存等过程中须遵循的基本要求和原则，保证CAR-T细胞制剂的安全性和生物学效应。 1.2　本标准适用于CAR-T细胞制剂制备的所有阶段。 2　规范性引用文件 下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。 《中华人民共和国药典》（三部） 《免疫细胞制剂制备质量管理自律规范》（中生协字〔2016〕035号） 3　术语和定义 下列术语和定义适用于本文件。 3.1 嵌合抗原受体T细胞（CAR-T细胞） chimeric antigen receptor T cell，CAR-T cell 经过基因工程修饰的，可表达被导入的含有抗原识别片段、T细胞受体活化分子、共刺激信号等信号分子的CAR基因的T细胞。 3.2 外周血单个核细胞 peripheral blood mononuclear cell；PBMC 血液中具有单个核的细胞，主要包括淋巴细胞、单核细胞、巨噬细胞、树突状细胞和少量其他细胞类型。 3.3 质粒 plasmid 一类存在于细菌和真菌细胞中独立于染色体DNA而自主复制的共价、闭合、环状DNA分子，通常携带一定数量的基因，是基因工程最常见的运载体。 3.4 目的基因 target gene 人工构建的具有明确功能的基因或基因片段。 3.5 载体 vector 在基因工程重组DNA技术中将DNA片段（目的基因）转移至受体细胞中进行复制和表达的工具。 注：常用的载体包括质粒、病毒等。 3.6 转导 transduction 借助病毒等方法将外源性遗传物质（DNA或RNA）导入细胞进行表达的过程。 3.7 转染 transfection 通过非病毒载体（如质粒）将外源遗传物质（DNA或RNA）植入细胞的过程。 3.8 冻存液 cryoprotectant 能保护细胞在冷冻和复苏过程不受损害的溶液或试剂。 3.9 标识 label 粘贴或附着在对象上的用于区分不同对象的标记、注释或条码。 3.10 细胞批次 cell batch 取自个体的细胞经单次细胞制备工艺过程制成的一批细胞制剂。 4　基本原则 4.1　总体要求 CAR-T细胞制剂的制备包括质粒的制备、病毒的制备、样本的采集、接收、处理、细胞刺激、转导/转染、扩增、收获、质量检测、冻存和运输等全过程。制备机构应建立健全CAR-T细胞制剂制备的质量管理体系，结合CAR-T细胞制剂制备的特殊工艺，对各个操作环节以及环境和人员等严格要求并实施，最终产品应符合质量标准。 4.2　人员 4.2.1　制备机构应配备与其规模相适应的CAR-T细胞制剂制备人员和质量检测人员，操作人员应具备基本的专业知识，并接受特定的专业技术培训后方可上岗。病毒和细胞制备技术人员身体健康无传染性疾病，能熟练掌握无菌操作技能，并具备病毒制备或人免疫细胞培养经验，其职称、学历、经历、资格证书、继续教育与健康记录，应建档保存。 4.2.2　建立人员卫生操作规程和自我防护规程，最大限度地降低人员对细胞制备造成污染以及操作人员自我感染的风险。操作规程应包括与健康、卫生习惯及人员着装相关的内容，以及操作过程中避免交叉污染和污物正确处理方法等内容。 4.2.3　维修人员或其他非专业人员进入制备区和质控区应经过培训和批准。 4.3　物料 4.3.1　CAR-T细胞制剂制备所用的物料是指制备中所使用的试剂耗材、生物活性因子以及与细胞制剂直接接触的包装材料及外包装材料等。 4.3.2　CAR-T细胞制剂制备所用的样本及物料应符合相应的质量标准。进口物料应符合国家相关的进口管理规定。细胞制剂制备中使用的物料管理应参照《中华人民共和国药典》中的《生物制品生产用原材料及辅料质量控制规程》实行管理。物料供应商应有相应的资质，并提供证明文件。 4.3.3　培养过程中对培养基、活性因子等外源蛋白的要求如下： a) 所有使用的培养基、活性因子等外源蛋白应有明确的来源及批号，应有质量检定合格报告； b) CAR-T细胞体外扩增培养应尽量避免动物或人源物质如血清等制品的使用，若必须使用，需要开展相关研究，证明使用的必要性和合理性；严禁使用疫病流行区来源和未经过安全性验证的动物血清等制品。 4.3.4　转导/转染过程中所使用的培养皿或培养袋等耗材和细胞因子等均需符合相应的质量标准。 4.3.5　制备机构应建立物料检验和放行质量标准，对生物活性试剂，制备机构应有相应措施确定有效期和保存条件，并在有效期内使用。 4.3.6　制备机构自制的试剂（如血浆、抗原等），应建立质量标准、编号及批号的编制操作规程，并经检验合格后使用，每种物料均应编制唯一的编号，并有制备记录。 4.4　设施和设备 4.4.1　CAR-T细胞制剂制备场所按照不同工艺应至少包括质粒制备区、病毒制备区、细胞制备区，质控区（支原体测定、内毒素测定、流式细胞仪检测和分子生物学等相关检测）和储存区（病毒储存区、细胞储存区），各个区域应相对独立。病毒制备区、病毒储存区应具有独立的空调系统。制备机构可根据实际情况合理分配和增加所需区域（留样室、办公室、资料档案室、物料储存室、气体储存室等）。 4.4.2　制备机构应根据工艺要求，对各功能区合理设计、布局和使用，应设立洁净区，洁净区的设计、建设、管理、进出、使用、清洁、消毒、环境检测等参见药品GMP规范无菌药品附录。 4.4.3　载体的制备应在C级背景下A级洁净度级别的环境中进行，载体在非密闭条件下的除菌过滤和灌装应在B级背景下A级洁净度级别的环境中进行；CAR-T细胞制剂制备过程中与细胞有关的操作，如细胞分离、转导/转染、扩增、收获等应在非密闭条件下的操作应在B级背景下A级洁净度级别的环境中进行。 4.4.4　制备机构应设置用于制备感染性样本的独立物理空间，设立独立的空调系统。使用后的器具和相关物品应经过灭活处理后再移出该区域。感染性样本与非感染性样本的处理及制备不得使用同一设备。 5　载体制备 5.1　质粒制备 5.1.1　质粒应序列信息明确，并经过鉴定和确认。质粒菌种应采取种子库系统，并按照《中国药典》相关要求完成菌种库的检定。菌种建库过程应符合药品GMP规范，同时应有明确来源和批次信息，并有详细记录。 5.1.2　质粒的质量应经过检测，包括但不限于： a) 纯度：超螺旋型的含量，细菌基因组DNA、RNA和蛋白残留量； b) 无菌试验； c) 内毒素试验； d) 酶切鉴定； e) 基因测序； f) 如工艺中使用有潜在危险性的物质，则需做物质残余量的测定。 5.2　非病毒载体制备 非病毒载体(包括但不限于DNA、RNA，蛋白质)应有明确的来源、结构和遗传特性，制备过程应符合药品GMP标准，达到相应质量标准的要求。不得含有支原体、细菌及病毒等其他任何外源因子，内毒素应控制在限定范围内；根据所选择载体类型不同，参见《细胞治疗产品研究与评价技术指导原则》（试行）、《人基因治疗研究和制剂质量控制技术指导原则》、《人用重组DNA制品质量控制技术指导原则》、《人用单克隆抗体质量控制技术指导原则》等。 5.3　病毒载体制备 5.3.1　病毒包装细胞系应采取种子库系统，建立主细胞库和工作细胞库，并按照《中国药典》相关要求完成细胞库的检定。细胞建库过程应符合药品GMP规范，有明确来源和批次信息，并有详细记录。 5.3.2　病毒包装所用细胞系的细胞培养液应成分明确并具有溯源性，使用人或动物源性成分，如血清、胰蛋白酶或其他生物学活性物质，应具有这些成分的来源、批号、质量控制、检测结果和质量保证的相关信息，应不得含有任何病毒等外源因子。 5.3.3　每一批用于转导/转染的病毒应经过检测，包括但不限于： a) 鉴别试验； b) 复制型病毒（RCR/RCL）检测（生产时的批次和冻存复苏时的批次）； c) 无菌试验； d) 内毒素检测； e) 支原体检测； f) 残留量测定：应根据生产工艺及成品的添加成份，对有潜在危险性的成份进行残留量检测； g) 病毒滴度测定； h) 效力试验：插入基因的表达水平测定及生物学活性测定。 5.3.4　应避免病毒载体反复冻融，病毒应储存于合适的环境中并进行稳定性研究，确定使用期限并在有效期限内使用。每批病毒应编制唯一的批号，并建立病毒的出入登记记录制度。 6　CAR-T细胞制备及质量控制 6.1　T细胞的采集和分离 6.1.1　制备机构应建立供者采集标准，进行细胞采集应具备相应的资质，应使用全自动血细胞分离机，按单核细胞分离程序，采集外周单个核细胞富集血，在技术上无法实现采集外周血单个核细胞富集血的情况下，可考虑静脉血采集方案。根据制备要求对采集的外周血进行单个核细胞的分离及T细胞的分选，并对所分选出的T细胞进行活化。 6.1.2　采集管路应使用一次性消耗品，血细胞分离机应定期进行清洁和检测。 6.1.3　在符合洁净级别要求的操作间分离PBMC，根据工艺要求再进一步确定是否分选特定细胞亚群进行转导/转染，转导/转染前进行细胞计数及细胞存活率测定。 6.1.4　传染性病毒检测阳性患者的T细胞应在感染性样本制备区进行细胞分离、培养、收集，完成制备过程。操作完毕应彻底清场、并应验证确认无该次操作残留感染风险物后方可进行后续供者的样品制备。 6.2　CAR-T细胞制备 6.2.1　样本送达时应附细胞制备申请单，内容包括但不限于： a) 患者姓名缩写、筛选号或入组编号或其他唯一识别码； b) 患者临床诊断，肿瘤特异性靶点信息； c) 实验室检测的结果：血常规及分类、HIV、HCV、HBV、EBV、CMV，HTLV，梅毒、肝肾功能、凝血检测；如果是异体治疗回输，应做ABO血型、Rh血型配型以及HLA配型检测； d) 治疗方案：细胞的种类、治疗次数、回输方式等； e) 知情同意书。 6.2.2　CAR-T细胞制剂制备应按照经过验证后批准的操作规程的要求进行，并有相关记录。 6.2.3　在感染性样本操作区内，操作人员应穿戴该区域专用的防护服。 6.2.4　在细胞培养耗材及培养箱上进行标识，并采取措施避免交叉污染。 6.2.5　操作前应检查所领用的包装材料正确无误，核对包装产品和所用包装材料的名称、规格、数量、质量状态，且与操作规程相符。 6.2.6　活化T细胞所采用的包被抗体或磁珠抗体应符合相关质量要求。 6.2.7　细胞转导/转染主要包括非病毒转染和病毒转导两种方式，应确认基因导入系统并对其进行验证，建立关键步骤控制点。 6.2.8　细胞扩增过程中每更换一次培养体系应准确计数，应根据质量要求对细胞浓度及培养时间进行调整。 6.2.9　CAR-T制剂的收获分为新鲜剂型和冻存剂型，冻存宜采用全封闭冻存袋的方式，在气相液氮储存环境下储存。 6.2.10　每批次细胞培养结束后，应进行清场，制备场所和设备应没有与本次制备有关的物料、产品、记录等遗留。 6.2.11　应建立CAR-T细胞制剂批号编制规程。每批细胞制剂应编制唯一的批号，并建立出入登记记录制度。 6.2.12　应避免出现任何偏离工艺规程或操作规程的偏差，如出现偏差，应按照偏差处理操作规程执行。 6.2.13　制备机构应建立CAR-T细胞制剂留样操作规程，留样应至少保存至使用结束后三个月。 6.3　CAR-T细胞制剂的质量控制 6.3.1　制备机构应具有CAR-T细胞制剂的检测能力，并配备相关专业技术人员和设备，建立制剂质量标准，确立制剂质量检验操作规程，所有检测方法应经过验证。 6.3.2　CAR-T细胞制剂的质量要求： a) 应进行无菌试验和支原体检测； b) 应进行内毒素检测； c) 应对细胞存活率和回输数量进行检测； d) 应对终产品中CAR-T细胞转导/转染率、免疫表型进行检测； e) 应检测CAR-T细胞制剂对特异性肿瘤细胞的杀伤作用； f) 病毒转导/转染后的细胞应进行RCR/RCL检测； g) 应进行CAR-T细胞的基因拷贝数检查（VCN）； h) 对于培养后不经冻存，直接回输的CAR-T制剂，应加强培养的全过程质量控制，设置 合理的取样点，并采用合理的快速检测方法进行质量控制； i) 如果细胞培养基内添加成分可能会对细胞制剂质量或安全性产生影响，应对培养基及其他添加成分残余量进行检测，如细胞因子等； j) 使用磁珠抗体刺激T细胞的，应检测制剂中的残余磁珠量。 6.3.3　制备机构应在CAR-T细胞制剂制备过程中开展质量检测，制剂的检验应由制备机构负责人指定有资质的人员进行。制备机构可以委托有资质的第三方开展相关质量检测。检测结果应有质量负责人或质量受权人签字审核。 6.4　CAR-T细胞冻存、运输与复苏 6.4.1　制备机构应建立CAR-T细胞的冻存和复苏操作规程，在规定的温度范围内储存细胞。应对冻存工艺（包括冻存液和冻存容器等）和复苏工艺进行验证，验证项目宜包括生物学效力、细胞纯度、细胞特性、活细胞数及比率、功能细胞数和安全性相关的内容等。 6.4.2　应建立CAR-T细胞制剂运输的标准操作规程，运输方式等应经过验证。 6.5　CAR-T细胞制剂的放行 6.5.1　制备机构应建立CAR-T细胞制剂放行的操作规程，符合质量标准的CAR-T细胞制剂由质量管理负责人或质量受权人批准后方可放行。 6.5.2　CAR-T细胞制剂经放行后方可进行回输。 6.5.3　每批次的CAR-T细胞制剂放行检测项目应至少包括：无菌检测、支原体检测、内毒素检测、细胞存活率、细胞数量、非T细胞表型、效应细胞比率、CAR转导/转染效率、CAR基因拷贝数、复制型病毒以及可能的毒性物质残留等。 6.5.4　如CAR-T细胞制剂质制备后需立即进行回输，可采用经过验证的快速检测方法。但应建立规程，规定采用快速检测方法放行后，使用现行通用检测方法检验出现不合格结果时采取的措施。 7　追溯 7.1　应建立完整的细胞制备记录系统、标识标签系统和免疫细胞制剂编码系统，以便于CAR-T细胞制剂的辨识并防止制剂混杂。记录和标识应遵循相关法律和规范的要求。 7.2　细胞制备记录包括每天的细胞状况，细胞数量，转导/转染条件，细胞因子浓度等具体信息。标识系统应记录患者信息、细胞制剂名称、批号、收获日期及时间、规格（细胞数量/体积）、储存条件、效期等。 7.3　每个患者的信息和操作全过程应双人复核。 7.4　每份CAR-T细胞制剂应编制唯一的编码。编码应能追溯到患者信息以及该细胞制剂操作和最终处理的所有记录。应建立相关程序保证新旧编码能够关联。 7.5　转移和运输记录应能追溯CAR-T细胞制剂从一个机构到另一个机构的流转过程。转移和运输记录应包括：CAR-T细胞制剂发放和接收的日期和时间、运输过程中的任何延误或其他突发状况引起的问题及相应的处置记录。 7.6　制备机构应建立不良反应报告和收集制度，在对不良反应进行分析时，应能追溯到所使用CAT-T细胞制剂制备的相关记录。 8　保密 应采取措施，防止病人的隐私信息被泄露。
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  • 《CAR-T制造工艺的优化升级》
    • 来源专题：生物安全知识资源中心 | 领域情报网
    • 编译者：hujm
    • 发布时间：2018-05-10
    • 诺华公司的Kymriah以及吉利德公司的Yescarta是全球首批上市的CAR-T疗法，目前全球有多项CAR-T疗法正在申报中。与任何治疗一样，CAR-T疗法的主要挑战不仅在于安全性和有效性，还在于创建可行的商业供应链。CAR-T开发商不仅要克服安全性和有效性的障碍以通过监管部门审批，还须证明能够应对与制造相关的复杂性，并将这种个性化、时间敏感型的疗法应用至更广泛的患者群体。CAR-T制造工艺的优化是实现这些目标的关键环节之一。 CAR-T细胞制造是一个非常复杂的过程，制造难、成本高已经成为了行业发展的瓶颈问题。目前，吉利德和诺华公司均采用的是集中生产模式，首先在医院中提取患者的T细胞，然后将这些细胞运送至制造中心，在制造中心对T细胞进行基因工程设计，最后将设计后的T细胞运回医院回输至患者体内。然而，无论使用何种制造模式，成功的CAR-T细胞制造都依赖于端到端流程的优化能力，包括工作流程的简化、产能规划以及生产的可扩展性等等。传统的制造工艺以及传统设备已经不能满足行业发展需求，自动化、全封闭的新一代制造工艺是未来趋势。 随着CAR-T制造工业的发展，目前市场上已经有一些解决方案供CAR-T开发商选择，例如博雅控股集团旗下的CAR-TXpress™、美天旎的CliniMACS Prodigy™以及GE公司的FlexFactory™等，这些平台受到了整个行业的关注，业内人士也对它们充满了期待。 一个典型的CAR-T疗法流程主要分为分离、修饰、扩增、回输以及监控五个步骤。在新兴细胞治疗领域，高效分离目标细胞是细胞制品生产和质量控制的基础。传统制造工艺中，细胞分离分选常常采用Ficoll密度梯度分离法和磁珠分离法。据了解，在CAR-T制造工艺升级的道路上，CAR-TXpress™平台采用基于不同细胞组分的不同密度系数进行物理分离的X-LAB™系统以及全新的专利浮力分离法（BACS）来取代传统的Ficoll密度梯度分离法和磁珠分离法；以及采用X-Wash™系统取代了传统的离心细胞收集手段，以避免细胞清洗的数目和活力的损失。 5月初，国际细胞治疗协会（ISCT）2018年年会公布了创新浮力法细胞分选系统X-BACS™以及X-Wash™系统的最新性能数据，CAR-T细胞制造工艺的优化升级首次以数字形式呈现，有助于人们了解CAR-T制造工业的发展。 X-BACS™是一种基于浮力的细胞分选方法，将目标细胞从细胞混合物分离出来。该方法使用抗体特异性来分选细胞，使用CD3抗体在混合物中标记T细胞，并使用靶向标记T细胞的微泡从混合物中分离CD3+T细胞。 分别采用Ficoll-Hypaque和X-LAB™系统来分离MNC（单个核细胞），并采用BACS技术对这两份MNC进行CD3+T细胞分选。试验结果显示，Ficoll法制备的那份MNC经分离所得CD3+的回收率均值为83.5%，活率均值为96.3%，纯度均值为95.1% ，而X-LAB?系统制备的那份MNC经分离所得CD3+的回收率均值为89.0%, 活率均值为98.3%，纯度均值为97.3%。 简而言之，X-LAB™ 系统分离MNC后用BACS技术分选CD3+的效果优于Ficoll法分离MNC后用BACS技术分选CD3+。浮力法细胞分选系统X-BACS™可以分离获得高纯度（95%）T细胞群，且确保回收率高达85%，细胞存活率高达95%以上。该方法用标准实验室设备即可简单操作完成。 一直以来，细胞产品，如造血干细胞，在低于-135°C环境下进行为期数十年的冻存，皆采用冷冻保护剂二甲亚砜（DMSO）。虽然复苏后的细胞产品活率较高，但DMSO被认为是引发细胞回输不良反应的潜在原因，清洗已复苏细胞产品去除DMSO和细胞裂解物可以减轻某些移植并发症。X-Wash™系统法是一种简单快速清洗复苏后可回输细胞产品的方法，能够高效去除已复苏细胞产品中的DMSO，有核细胞回收率高于85%，且基本不会失活，整个过程耗时不超过1小时，并且这种方法采用标准实验室设备简单操作就能完成。 在试验中，根据供应商的操作说明将购买的健康成人冻存组织进行复苏，在已复苏产品中添加复苏清洗溶剂（含2.5%HSA、 5%葡萄聚糖以及20g/mL脱氧核糖核酸酶的生理盐水），再将样本转移至转移袋中（此步骤非必选）。将样本转移至X-Wash?系统一次性处理套件中。离心后，以正压去除废液，再以负压添加新溶剂。经最后一遍离心，细胞被收集至回收仓，溶于事先注入仓中的溶剂。试验结果显示，X-Wash™系统清洗所获CD45+细胞的总量和活率平均值分别为96.0%和93.7%；所获CD3+细胞的总量和活率平均值分别为96.3% 和92.4%。 对比发现，新一代制造工艺在细胞回收率、活性等性能上取得了显著的优化。目前，新一代CAR-T制造工艺诸如CAR-TXpress™平台融入了全新元素，不仅提高了细胞回收率等数据性能，还能够实现操作过程的自动化，避免了传统人工操作不可预期的可变性，降低制造成本、增加产品的一致性、提高运营效率、降低运营变量，有助于实现整个制造过程的标准化。
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