利用可编程核酸酶进行植物定向诱变的技术发展迅速,在下一代植物育种中具有巨大潜力。值得注意的是,簇状规则间隔短回文重复序列(CRISPR)–CRISPR相关蛋白-9核酸酶(Cas9) (CRISPR–Cas9)系统为快速和经济有效地在植物中建立新的突变群体铺平了道路。尽管已成功地利用农杆菌介导的转化或粒子轰击将Cas9-引导RNA(gRNA)表达盒和可选择标记物整合到基因组DNA中的方法,从多个物种中获得基因组编辑的植物,但CRISPR–Cas9整合增加了偏离目标修改的可能性,而且外源DNA序列引起了对转基因生物的立法关注。因此,已经开发出无DNA基因组编辑技术,包括通过聚乙二醇-钙(PEG–Ca2+)介导转入烟草、拟南芥、莴苣、水稻、矮牵牛花、葡萄藤、苹果和马铃薯,或通过基因枪轰击进入玉米和小麦的胚胎细胞,将预装配的Cas9–gRNA核糖核蛋白(RNPs)传递到来源于体细胞组织的原生质体中。然而,原生质体的分离和培养在大多数植物物种中是不可行的,通过基因枪轰击获得基因组编辑植物的频率相对较低。在这里,我们报告了一个基因组编辑系统,直接将Cas9–gRNA RNPs传递到植物合子中。将Cas9–gRNA RNPs导入离体配子体外受精产生的水稻合子中,在不进行选择的情况下将合子培养成成熟植株,导致14-64%的水稻植株发生靶向突变再生。这种高效的植物基因组编辑系统对于水稻及其他重要作物品种的改良具有巨大的潜力。