《Nature重磅:电穿孔技术可将基因编辑缩短至几周》

  • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
  • 编译者: hujm
  • 发布时间:2018-07-15
  • 病毒载体的应用和瓶颈

    目前上市的两款CAR-T疗法,其使用的基因编辑技术均依赖于病毒载体。这是对病毒的一次成功改造——很久以前我们就知道,病毒的遗传物质能穿透细胞膜,进入到细胞内,引起感染。这个特性引起了科学家们的兴趣。在1970年代,“生物黑客”们移除了病毒中的致病部分,将它们改造成了递送遗传物质的工具。“病毒载体”一词也由此诞生。如今,这些病毒在基因疗法和细胞疗法中得到了广泛的应用。

    尽管基于病毒载体的先进疗法在研发上取得了诸多突破和进展,也让我们看到了创新基因疗法和细胞疗法井喷的希望,但病毒载体本身却有着成本高、周期长的瓶颈。此外,单靠病毒载体也无法将基因精准地插入到所需的位置,能带来潜在风险——它们可能会影响到健康基因的表达,或是导致插入基因被异常调节,出现失控。这些风险都是高悬于病毒载体头上的达克摩利斯之剑,使我们在基因疗法和细胞疗法的研发上不得不慎之又慎。

    “人们花了30年的时间,想要把基因转入到T细胞中。”该研究的第一作者,正在攻读MD/PhD学位的Theo Roth说道。他指出,为了开发用于T细胞编辑的病毒载体,即便有6-7名科学家辛勤工作,也要花上约数月,甚至是一年来进行开发。如果能找到一种不使用病毒载体,但依然能对细胞进行有效编辑的方法,无疑将极大地加速先进疗法的开发。这对整个领域而言,可能带来革命性的变化。

    而本篇《自然》上公布的方法看起来简单得不可思议:谁也没有想到,几十年前就在微生物研究中大放异彩的电穿孔技术(electroporation),竟能在细胞疗法的开发上焕发光彩。

    “海格力斯的试炼”

    许多看似简单的成果背后,往往有着常人难以想象的枯燥工作,这项研究也不例外。尽管在几十年前,我们就在微生物中尝试了电穿孔方法来引入外源DNA,但这种方法先前尚未在细胞疗法里得到广泛应用,不是没有原因的。

    在电穿孔技术中,研究人员们会给细胞施加一个电场,瞬间增加细胞膜的通透性,让双链DNA进入细胞。但在T细胞内,一旦引入较长的双链DNA片段,竟会导致这些细胞的死亡。在经过大量的尝试后,许多科学家们都放弃了这个挑战。他们认为,较长的双链DNA会对T细胞产生毒性。相比之下,引入单链寡核苷酸则更具可行性。

    但Theo则不信这个邪。从之前的一些研究结果中,他敏锐地观察到,如果在电穿孔技术中同时应用CRISPR-Cas9系统与双链DNA模板,就有望能减少双链DNA相关的细胞毒性。这给他的研究带来了突破口,也带来了更多的问题:CRISPR和DNA的最佳比例是多少?DNA的质量需要多高?这些T细胞需要特殊培养吗?电穿孔所使用的电流强度是多少?只有各个条件都得到了优化,我们才能有效地使用这种简便的方法,去改造T细胞。

    除了挨个尝试之外,Theo没有其他选择。

    该研究的负责人Alexander Marson教授认为,Theo的坚守对成功至关重要。尽管主流学界都相信T细胞只能耐受小片段的DNA,都相信病毒载体不可或缺,但Theo不惧权威,“展现出了海格力斯般的努力,测试了数千种不同的条件”。

    成功建立在数千次失败之上。经过近一年的反复尝试,Theo终于总结出了一套行之有效的方法,并成功证明这套不使用病毒载体的系统,能成功对基因组进行高效编辑。在概念验证性的实验中,这支团队成功让绿色荧光蛋白按照需求,在细胞核、细胞膜、细胞骨架、以及细胞器中特异表达。

    更令人印象深刻的是,这套系统能将原来需要花费数月甚至数年的工作,缩短到仅仅几周!

    临床应用的曙光

    为了进一步验证这套系统的潜力,研究人员们又做了两个实验。在第一个实验中,他们从罹患罕见自身免疫疾病的患者中取得了T细胞。基因组测序结果表明,这些T细胞的IL2RA基因带有突变,让它无法行使正常功能。因此,患者体内的调节性T细胞会出现发育异常,无法有效地控制免疫系统,从而让它对自身展开攻击。

    利用他们开发的新型技术,这群科学家们快速地修复了T细胞中的IL2RA基因缺陷,重塑关键的细胞通路。出于安全性上的考虑,研究人员们没有将经改造的细胞输注回患者体内。但类似于CAR-T疗法,未来,我们有望在体外修正患者的T细胞,并在扩增之后,重新输注给患者,治疗他们的自身免疫疾病。

    在第二项研究中,科学家们则把目光投向了癌症的治疗。他们从健康人体内获取了T细胞,并更换了它们的T细胞受体,使这些细胞能特异性地攻击某种人类的黑色素瘤细胞。在培养皿中,这些T细胞能有效地靶向黑色素瘤细胞,而不会识别其他类型的细胞,表明了其特异性。而在小鼠的肿瘤模型里,这些具有全新受体的T细胞也同样能聚集在肿瘤位点,展现出抗癌的活性。

    “这是一种快速、灵活的方法,能对T细胞进行改造、增强、以及重编程,使我们能赋予这些细胞各种特异性,用来摧毁肿瘤,识别感染,或是减少它们的免疫反应,治疗自身免疫疾病,” Marson教授补充道:“现在,我们参与到了所有的前沿领域中。”

    这项成本更低,且能在短短数周内完成自定义T细胞改造的方法,得到了许多业内专家的看好。如果它能在细胞疗法的开发上得到更多应用,无疑将有潜力改变当下的研发格局。近期,美国FDA出台了一系列针对基因疗法和细胞疗法的政策,鼓励这些先进疗法的研发。我们期待在这个激励创新的大环境下,更多突破性的技术能得到转化,为全球患者带来更多有效疗法。

  • 原文来源:http://news.bioon.com/article/6724778.html
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    • 在一项新的研究中,来自美国加州大学旧金山分校的研究人员在不使用病毒插入DNA的情形下对人T细胞(一种免疫细胞)进行重编程。这一成就对研究、医学和产业产生重大的影响。他们期待他们的方法---一种快速的通用的经济的采用CRISPR基因编辑技术的方法---将会在新兴的细胞治疗领域中得到广泛使用,加速开发出新的更加安全的治疗癌症、自身免疫疾病和其他疾病(包括罕见的遗传性疾病)的疗法。相关研究结果于2018年7月11日在线发表在Nature期刊上,论文标题为“Reprogramming human T cell function and specificity with non-viral genome targeting”。 这种新方法提供了一种强大的分子“剪切和粘贴”系统,用于重写人T细胞中的基因组序列。它依赖于电穿孔,即一种将电场施加到细胞上使得它们的细胞膜暂时地更具有渗透性。在一年内试验了数千个变量之后,这些研究人员发现,当某些数量的T细胞、DNA和CRISPR“剪刀”混合在一起然后暴露在一种适当的电场中时,这些T细胞将摄入DNA和CRISPR剪刀,并且精确地将特定的基因序列整合到CRISPR在基因组中的靶切割位点上。 论文通信作者、加州大学旧金山分校微生物学与免疫学副教授Alex Marson博士说,“这是一种快速而又灵活的方法,可用于改变、强化和重编程T细胞,这样我们就能够给它们提供我们想要的特异性来清除癌症、识别感染或者抑制自身免疫性疾病中观察到的过度免疫反应。” Marson说,不过与这种新方法的速度和易用性同样重要的是它使得将比较长的DNA序列插入到T细胞中成为可能,这种插入会给这些T细胞赋予强大的新特性。Marson实验室的成员已在利用电穿孔和CRISPR将短DNA片段插入到T细胞中取得了一些成功,但是,在此之前,许多科学家们将较长的DNA序列插入到T细胞中的多次尝试导致这些T细胞死亡,这就让大多数人认为较长的DNA序列对T细胞是极其有毒性的。 为了证实这种新方法的多功能性和功效,这些研究人员利用它修复来自三名患有一种罕见遗传形式的自身免疫疾病的儿童的T细胞中的引起疾病的基因突变,并且还利用它构建出定制的T细胞来寻找和杀死人黑色素瘤细胞。 病毒通过将它们自己的遗传物质注射到细胞中而引起感染,而且自20世纪70年代以来,科学家们借鉴病毒的这种能力,除去它们的传染性,由此产生的“病毒载体”可将DNA转运到细胞中用于研究和基因治疗,并且构建CAR-T细胞用于癌症免疫疗法。 如今,利用病毒对T细胞进行基因改造已被美国食品药物管理局(FDA)批准用于抵抗某些类型的白血病和淋巴瘤。但是构建病毒载体是一个艰苦而成本昂贵的过程,而且临床级病毒载体的短缺导致基因疗法和基于细胞的疗法陷入制造瓶颈。即使在可用的情况下,病毒载体也是很不理想的,这是因为它们将基因随意地插入到细胞基因组中,这可能损害现有的健康基因或让新导入的基因不受确保细胞发挥正常功能的调节机制的调节。这些限制可能潜在地导致严重的副作用,因而在基因疗法和细胞疗法(比如基于CAR-T细胞的免疫疗法)中引发人们的担忧。 论文第一作者、在加州大学旧金山分校医学科学家培训计划攻读博士学位的研究生Theo Roth说,“已有30多年的研究工作试图将新的基因导入到T细胞中。如今,应当不再需要实验室中的六到七个人利用病毒对T细胞进行基因改造,而且如果我们开始看到数百个实验室而不是少数实验室对这些T细胞进行基因改造,并研究越来越复杂的DNA序列,那么我们将尝试更多的可能性以便显著加快未来几代细胞疗法的开发。” 经过将近一年的反复试验,Roth确定了T细胞群体、DNA量和CRISPR丰度的比例,并且在施加具有适当参数的电场的情形下,能够高效而又准确地编辑T细胞的基因组。 为了验证这些发现,Roth利用CRISPR给一系列不同的T细胞蛋白标记上绿色荧光蛋白(GFP),这种标记结果是高度特异性的,具有非常低水平的“脱靶”效应:仅通过Roth设计出的CRISPR模板而被标记上GFP的每个亚细胞结构才会在显微镜下发出绿色荧光。 随后,在旨在对这种新方法的治疗前景进行概念验证的补充实验中,Roth、Marson及其同事展示了它如何潜在地被用来引导T细胞抵抗自身免疫疾病或癌症。 在第一组补充实验中,Roth及其同事们使用了美国耶鲁大学医学院医学博士Kevan Herold提供给Marson实验室的T细胞。这些T细胞来自三名患有罕见的严重性自身免疫疾病而且迄今为止一直对治疗产生抵抗力的兄弟姐妹。基因组测序已表明这三名儿童的T细胞在IL2RA基因上携带着突变。这个基因含有表达一个细胞表面受体的指令。这个细胞表面受体是控制其他的免疫细胞和阻止自身免疫反应的调节性T细胞产生所必需的。 利用这种非病毒CRISPR技术,这些研究人员能够快速地修复这三名儿童T细胞中的IL2RA突变,并恢复受到这种突变影响的细胞信号。在CAR-T细胞免疫治疗中,已从患者体内取出的T细胞经过基因改造后能够增强它们的抗癌能力,随后将它们灌注回患者体内,从而靶向攻击肿瘤。这些研究人员希望一种类似的方法也可能有效地治疗调节性T细胞发生功能故障的自身免疫疾病,比如这三名携带着IL2RA突变的儿童所患的疾病。 在第二组补充实验中,通过与加州大学洛杉矶分校帕克癌症免疫疗法研究所的Cristina Puig-Saus博士和Antoni Ribas博士合作,Marson团队利用已经过特异性地基因改造靶向摧毁一种特定的人黑色素瘤细胞亚型的新型T细胞受体完全取代一种正常的人T细胞群体携带的天然T细胞受体。T细胞受体是T细胞用来检测疾病或感染的传感器,并且在实验室培养皿中,这些经过基因改造的T细胞高效地靶向黑色素瘤细胞并且同时忽略其他的细胞,从而表现出精确癌症医学所需的靶向特异性。 在不使用病毒的情况下,这些研究人员能够产生大量的经过CRISPR重编程的T细胞,这些T细胞经重编程后产生新的T细胞受体。当被移植到已植入人黑素色瘤的小鼠中时,这些经过CRISPR重编程的人T细胞进入肿瘤部位并显示出抗癌活性。 Marson 说,“这种替换T细胞受体的策略能够推广到任何一种T细胞受体。通过这种新技术,我们能够对基因组的特定位点进行分子剪切和粘贴,从而重写基因组序列中的特定片段。” Roth说,鉴于这种新技术能够在一周多一点的时间内构建出可行的定制T细胞系,它已改变了Marson实验室的研究环境。针对之前因病毒载体带来的障碍而被认为过于困难或昂贵的实验的想法如今能够加以研究。Roth说,“我们将研究20个'疯狂'的想法,这是因为我们能够非常快速地创建CRISPR模板,而且一旦我们有了模板,我们就能够将它放入T细胞中并快速地培养这些T细胞。” 在面对人们普遍认为病毒载体是必需的以及T细胞仅耐受小片段DNA的情形下,Marson将这种新方法的成功归功于Roth的“绝对坚持”。“Roth确信如果我们能够找到合适的条件,我们就能够克服这些明显的限制,而且他付出了巨大的努力来测试数千种不同的条件:CRISPR与DNA的比例;不同的T细胞培养方法;不同的电流。通过优化每个参数并将最佳条件放在一起,他能够观察到这个令人吃惊的结果。”
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    • 仅仅数年间,使用 CRISPR(规律成簇间隔短回文重复)/ Cas9 进行基因组编辑在科研上激起了巨浪,该技术使研究人员能够精确而方便地编辑特定的基因。然而,新技术也存在一些缺点,例如在错误的地点切割 DNA,甚至是随机地进行 DNA 编辑。 但是科学家们很快开始将 CRISPR 拉回了正确的轨道,如今创新性的分子特性使它更好地作用并能用于更多类型的细胞。CRISPR 应用的迅速出现意味着艾滋病、癌症、镰状细胞病等其他疾病的临床试验出现了端倪。 今天的 CRISPR 技术对于更多研究者来说也是一个尖端的工具,与其他基因调控方法相比,更适应于未来的医疗应用。“回到 RNA 干扰(RNAi)时代,感觉就像进入了超光速飞船。” 整合 DNA 技术公司的高级副总裁和首席科学官 Mark Behlke 说,该公司提供 RNAi 和 CRISPR 的试剂。“但现在 CRISPR 使它看起来像一个孩子的游戏,实在令人惊讶。” 相比于其他基因编辑方法,如 TALENs(类转录激活因子效应物核酸酶)和锌指核酸酶, CRISPR 更加快捷便宜,也更易于使用,从而快速地被许多领域的科学家所接受。例如,癌症研究人员将包含编码 CRISPR 向导 RNA(guide RNA)和 Cas9 (CRISPR 关联蛋白 9)的质粒 DNA 转入细胞系中,创造出对应不同研究的癌细胞系。 然而斯坦福大学医学院副教授,儿科医生 Matt Porteus 对于 CRISPR 起初有着不同的体验。他说,“每个人都表示 CRISPR 会帮助解决世界上的所有问题,但当我们试图将细胞中的 CRISPR DNA 质粒应用在我们认为重要的治疗中,如造血细胞系或其他原代人类细胞类型,该系统根本不起作用。” 因此,Proteus 实验室研制出的一种在人原代细胞中进行 CRISPR/Cas9 编辑的不同递呈方法, 完全不需要 DNA 质粒。 该方法的变化在于通过核糖核蛋白(RNPs)形式将 CRISPR/Cas9 试剂引入细胞。“研究人员将这些试剂(gRNA 和 Cas9 蛋白)组合起来,给它们 5 到 10 分钟的时间形成复合体,从而合成出 RNPs。” 赛默飞世尔公司合成生物学研发部高级主管 Jon Chesnut 说,“CRISPR RNPs 可通过脂质纳米粒子或电穿孔的方式传递到细胞中。” 虽然 RNP 试剂已被广泛使用,但近些年研究人员对它们的兴趣还停留在 CRISPR 方法的层面。“这是由于早期基于质粒的方法中有大量的 DNA 工具被广泛接受,大家还存在意识的盲区。” Dharmacon 公司(GE 医疗集团的子公司)高级产品经理 Louise Baskin 说。与质粒载体方法相比,无 DNA 的、基于 RNP 的 CRISPR 方法的好处在于没有意外 DNA 的插入,能够降低毒性,对目标效果更好,并且提高了特异性。 这些优点使得无 DNA 的 CRISPR 工具更适合于在治疗中应用。“对我们来说,在原代组织和原代细胞类型中的基因编辑能力是一个巨大的突破。” 加州大学旧金山分校(UCSF)细胞与分子药理学博士后 Judd Hultquist 说。 通过与 Kathrin Schumann(UCSF 医学院微生物学和免疫学博士后)合作,Hultquist 将 Dharmacon 公司 Edit-R 合成 gRNAs 的 RNPs 用在人原发性 T 细胞中,该细胞是艾滋病病毒的主要目标。现在他们正在开发一种基于 RNP 的平台,目标在于寻找能够提高 T 细胞对 HIV 感染抗性的遗传变化。 CRISPR 的核糖核蛋白的使用也彻底变革了模式动物系统(例如秀丽线虫)。对于秀丽线虫而言,CRISPR 是一个真正的游戏改变者。” 华盛顿大学医学研究所副教授 Brian Kraemer 说,他是 IDT 公司的无 DNA CRISPR 试剂的使用者。 将核糖核蛋白注入到线虫性腺区,可以进行生殖细胞的基因组编辑,随后可以分离出具有编辑表型的后代进行后续研究。Kraemer 的实验室利用线虫作为模式去识别蛋白质聚集疾病(如老年痴呆症和肌萎缩性侧索硬化症)的致病机制所需要的基因。 Kraemer 认为,新的 CRISPR 工具将引燃下一代线虫转基因模型,包括定制等位基因,依照实验的目的而改变基因编码蛋白,例如通过改变胞内转运蛋白的靶序列,可以使它定位到一个不同的细胞膜区域。 提高原代细胞(也包括其他细胞)CRISPR 的关键之一,是近期的增强试剂。IDT 公司开发了经过化学修饰的能够在胞内抵抗核酸酶降解的 gRNA。该公司还开发了两个短的 RNA 形式的 gRNAs(就像在原初细菌系统中),能够形成复合体,而不是单一的、更长的 gRNA。MilliporeSigma 公司也计划提供称为 “SygRNAs” 的两部合成 gRNAs。 牛津大学威廉邓恩爵士病理学院的基因组工程平台负责人 Joey Riepsaame,采用 IDT 公司的 Alt-R CRISPR/Cas9 RNP 系统来辅助进行基因编辑实验。Riepsaame 称赞 IDT 公司的两步合成 gRNAs,能够减少诱发不必要的免疫反应。“这对我来说是一个非常重要的因素,因为我的项目涉及到使用 CRISPR/Cas9 纠正免疫细胞中疾病诱发的突变。” 他说,“到目前为止,我们还没有在 CRISPR/Cas9 中遇到任何重大的挑战,并且能够靶向到每个感兴趣的区域。” 优化的 CRISPR 试剂,如 RNPs 也给研究人员提供新的机会。以 DNA 为基础的 CRISPR(甚至 Cas9 的信使 RNA)的一个问题,是在开始编辑前存在一个滞后阶段,这期间细胞机制会转录和 / 或翻译活性 CRISPR 试剂。例如,将基于 DNA 或 mRNA 的 CRISPR 试剂注射进胚胎中时,结果能够产生一种称为 “镶嵌体”,也就是具有超过一种的遗传信息的动物。“RNP 的方法能够降低镶嵌现象,因为它的试剂在引入的同时就被激活,在编辑后快速降解,同时对于降低脱靶效应也有好处。” IDT 公司的 Behlke 说。 其他的新工具,包括用于将 CRISPR 试剂更好的传递到细胞中的转染试剂。MTI-GlobalStem 公司新的 EditPro 干细胞转染试剂能够将 CRISPR 工具传递到细胞中,而他们的 EditPro 转染试剂能够传递进人类原代细胞以及细胞系。“新的 EditPro 转染试剂依照 mRNA 的量,具有广泛的可调节剂量。”MTI globalstem 公司科学总监 James Kehler 说 除了优化 CRISPR 试剂,研究人员也正在以新的、创造性的方式来使用 CRISPR/Cas9 系统。例如,去除 “剪刀” 功能的 Cas9 变成一种有效的分子靶向的工具,可以将附加效应分子靶向到基因组的特定区域。不同的效应分子,如激活子、抑制子或者修饰子也已经被研究。MilliporeSigma 公司的 dCas9-p300 激活子就是一个融合了 p300 组蛋白乙酰转移酶结构域的非切割版本的 Cas9。一经结合,该激活子能够使附近的组蛋白乙酰化,为增强和持续的基因表达打开了染色质。 尽管基于 RNP 的 CRISPR 技术在近期大获成功,在用于功能筛选时,基于质粒技术还是存在一席之地。为了鉴定引发疾病的基因,一些公司提供了基于慢病毒 CRISPR 的基因敲除文库。美国西北大学费因伯格医学院小儿神经外科副教授 Simone Treiger Sredni 近期利用赛默飞世尔科技公司的 LentiArray CRISPR 文库去筛选 160 种影响细胞增殖的激酶的突变。Sredni 研究主要集中在寻找与儿童非典型畸胎样 / 横纹肌样瘤(atypical teratoid/rhabdoid tumors ,AT/RTs) 的治疗方案,这是一种侵入性和致死类型的儿童脑瘤。 Sredni 在一些特定的激酶中筛选了一致的突变,能够减少 AT/RT 细胞系的细胞增殖。她说,“其中一种激酶的抑制剂能够与缺失基因产生同样的效应,使得肿瘤不再生长。” 她也观察了利用高通量的基因表达平台进行的筛选,“这个基因从此不起作用了,因为它的表达水平是非常低的。” 接下来,Sredni 将研究抑制剂在小鼠移植瘤中的效应。 MilliporeSigma 公司还提供了基于慢病毒的,用于全基因组筛选 CRISPR 工具。通过与惠康基金会桑格研究所合作,MilliporeSigma 最近还为人类和小鼠的基因组构建了阵列式的全基因组 CRISPR 文库的,提供的格式、传递方式和范围(即单基因、基因家族,或整个基因组)都很灵活。 安捷伦公司日前也发布了集合性 CRISPR 筛选指导库,包括通过慢病毒载体传递的 CRISPR 基因敲除文库,包括了人类和小鼠的基因组尺度。为了获取充分的灵活性,安捷伦还提供了前扩增和不扩增的用户定制文库。“我们的 CRISPR 集合库利用 CRISPR/Cas9 在整个基因组上进行敲除,在功能筛选中被广泛使用。”安捷伦公司分子和合成组诊断和基因组生物学全球营销总监 Caroline Tsou 说,“通常这种敲除用来确定参与的细胞反应的基因,如信号转导通路,或发现新基因的功能。”安捷伦还提供长达 230 个碱基对的定制化的寡核苷酸,能给研究者 “探索文库其他用途的自由。” 她说。 但有时当细胞在被迫表达细菌核酸酶时,状态都不是太好。Dharmacon 公司的 Edit-R 诱导慢病毒 Cas9 系统对于那些不愿意在稳定细胞系中长时间含有核酸酶的研究人员来说,是 “一个很好的妥协。” 巴斯金说。“诱导系统发挥了最好的一面,因为当准备使用向导 RNA 处理细胞时,他们可以开启核酸酶的表达,得到充分表达的 Cas9,随后在完成切割后再将它关闭。” 与此同时,各种各样的 CRISPR 试剂已经为了对抗疾病准备就绪,特别是使用无 DNA 的方法。比如,RNP 方法的快开、快关的特性非常适合治疗性应用,CRISPR 试剂可以定向切割随后迅速降解。 但是纠正基因缺陷并不像敲除基因那么容易,因为通常行使功能的基因也必须被引入到正确的位置上。位于斯坦福的 Porteus 实验室最近发表了概念验证的 CRISPR RNPs,用于靶向β- 球蛋白基因,该基因的突变导致镰状细胞病。他们发现 CRISPR 可以修正这种疾病患者的人类造血干细胞中的β- 珠蛋白基因缺陷。此外,在加州大学伯克利分校的一个实验室独立地完成了一个类似的 CRISPR 编辑β珠蛋白基因的结果,使用稍微不同的方法来进行基因修正。 综合起来,这些工作给即将进行的人体临床试验带来了福音。2016 年 6 月,美国国立卫生研究院在美国批准的第一个临床试验,将使用 CRISPR 编辑人类 T 细胞帮助改善癌症治疗,预计该实验要持续到 2017 年。 同时,Porteus 实验室正在着手将 CRISPR 编辑的细胞用在病人身上,他们期望能在 2018 年开始临床试验。他们可能首先针对镰状细胞病,其次是严重的联合免疫缺陷(SCID)。Porteus 实验室不仅希望利用 CRISPR 修正突变,同时能够给细胞增加新的特性,从而可以治疗疾病,“例如抗 HIV 的免疫系统,或创建能够传递蛋白质到脑部的细胞。” 他说。“在科学和医学的生态链中,我们觉得自己的角色应该是将这些技术带给病人。” 随着 CRISPR 研究工具的飞速发展,以及将于近期开始的临床试验,我们与目标的距离可能比想象中更近。