《单细胞拉曼结合靶向宏基因组揭示土壤活性抗生素耐药组》

  • 来源专题:转基因生物新品种培育
  • 编译者: 姜丽华
  • 发布时间:2022-10-31
  •      抗生素耐药性(AMR)在人类、环境和动植物间的传播,加剧全球“One Health”的负担。土壤是“One Health”的关键环节之一,所携带的抗生素耐药性可通过食物链等方式转移至人类而带来健康威胁。土壤中栖息着地球上最丰富多样的微生物,其中活性耐药菌在驱动土壤耐药性传播中具有关键作用。然而,由于高达99%的土壤微生物不可培养,针对土壤原位活性耐药菌的探索较少,土壤中抗生素耐药性风险的研究面临挑战,阻碍了AMR环境行为及阻控策略的发展。

      虽然分子生物学技术提升了我们对土壤微生物组和抗性组的认识,但基因信息仅反映耐药潜力而非耐药表型,且不能区分胞外、死亡或休眠菌的DNA,因此难以解析具体发挥作用的耐药微生物,影响AMR健康风险的精确评估。基于培养的方法仅能关注少数可培养的指示菌,忽视了土壤中大量未培养菌的贡献。因此,亟需开发合适的技术手段,从表型和基因型两个层面全面解析土壤中重要的活性耐药菌。

      中国科学院院士、中国科学院城市环境研究所研究员朱永官团队在《美国国家科学院院刊》(PNAS)上,发表了题为Active antibiotic resistome in soils unraveled by single-cell isotope probing and targeted metagenomics的论文。该研究通过发展单细胞拉曼-稳定同位素标记和靶向宏基因组联用技术,示踪了土壤原位活性抗生素耐药菌,量化了其表型耐药水平,并结合单细胞靶向分选与测序揭示了土壤高活性耐药菌的抗性组和移动组。朱永官团队长期致力于环境耐药性研究,并在“One Health”的背景下提出监测和防控抗生素耐药风险的方法理论框架。

      该研究利用单细胞拉曼-重水同位素标记技术,针对土壤的复杂性以及对抗生素有效性的影响,通过优化抗生素剂量、孵育时间、采谱深度,建立了准确示踪土壤活性耐药菌的单细胞方法与判别标准,利用土壤原位环境的多种已知抗性菌和敏感菌,对方法在不同土壤和不同机制抗生素的普适性和准确性进行交互验证,将方法从简单的临床耐药菌的研究拓展至包含大量未培养菌的复杂土壤环境。

      利用该方法,研究在单细胞水平和表型层面克服培养限制,直接示踪和定量了土壤原位活性耐药菌的丰度和活性水平,揭示了人类活动(如农业耕种和污染排放)显著增加土壤的表型耐药水平。由于高代谢活性耐药菌对AMR环境传播的重要作用,研究进一步提出将表型耐药水平作为环境AMR风险评价的新指标,改进了长期以来AMR风险评价仅有基因信息而无耐药表型信息的境况。

      该研究针对拉曼技术识别具有潜在健康风险的高度活跃土壤耐药菌,利用单细胞分选与靶向宏基因组测序技术,鉴定出多数高表型耐药菌属于之前难以研究的未培养菌以及一株新型的抗生素抗性病原菌,证明了土壤未培养菌是AMR的重要宿主。科研团队在单细胞水平破译了活性耐药菌携带的抗性基因、毒力因子、可移动遗传元件(包括质粒、插入序列和前噬菌体)。该工作将多种抗生素耐药表型和多种基因型关联,为剖析环境中大量未培养耐药菌提供了崭新的方法。

      该工作发展的单细胞拉曼结合靶向宏基因组的方法,为复杂环境耐药研究提供了新手段,深化了科学家对土壤活性抗生素耐药性的认知。该方法可广泛用于其他生态系统,并对在“One Health”框架下推进环境耐药性的风险评估与制定防控策略具有重要价值。研究工作得到国家自然科学基金相关人才计划项目、创新研究群体项目、面上项目,以及中国科学院基础前沿科学研究计划“从0到1”原始创新项目的支持。


  • 原文来源:http://www.cas.ac.cn/syky/202209/t20220927_4848957.shtml
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  • 《抗生素耐药性新机制研究最新进展(第2期)》

    • 来源专题:人类遗传资源和特殊生物资源流失
    • 编译者:yanyf@mail.las.ac.cn
    • 发布时间:2018-12-01
    • 抗生素的出现,拯救了无数生命。但是细菌对于抗生素产生的耐药性问题也逐年加重,新药研发的速度远跟不上细菌耐药出现的速度。 多年来,由于抗生素的滥用,多种耐药性基因开始在全球蔓延。一旦大肠杆菌、肺炎克雷伯菌、鲍曼不动杆菌和其它类似的肠道栖息生物产生耐药性,那么对革兰氏阴性菌有很强杀菌作用的多粘菌素(polymyxin)和具有广谱抗菌作用的碳青霉烯类抗生素就是我们仅剩的为数不多的选择。但是令人讽刺的是,在包括中国在内的一些国家,多粘菌素等抗生素常被用作动物饲料的添加剂,因为它能够促使动物更快地长肉,结果导致耐药性细菌甚至超级耐药细菌接连出现。 抗生素耐药性是一个重大的日益严重的全球性问题。根据世界卫生组织的统计,抗生素耐药性在世界所有地方上升到危险的高水平,而且新的耐药性机制出现并且在全球扩散,从而威胁着我们治疗常见性传染病的能力。但是这些细菌耐药性机制是如何发生的,以及我们是否能够预测它们的进化,仍然在很大程度上是未知的。 小编盘点了近期提出的细菌耐药性产生的新机制,以飨读者。这些新机制表明细菌耐药性机制的产生可能远超我们的想象。 1. Science:重磅!发现第三种迄今为止最为有效的细菌抗生素耐药性获得途径---侧向转导 doi:10.1126/science.aat5867; doi:10.1126/science.aav1723 噬菌体是感染细菌并寄生在它们内部的病毒。这些噬菌体能够通过一种称为遗传转导(genetic transduction)的过程将DNA从一个细菌转移到另一个细菌中。这被认为是细菌进化和获得抗生素耐药性和毒力因子的主要手段,其中这些毒力因子加快新的和致病性逐渐增加的菌株出现。到目前为止,人们已经知道两种遗传转导机制:普遍性转导(generalized transduction)和特异性转导(specialized transduction, 也称局限性转导)。60多年来,自从美国科学家和诺贝尔奖获得者Joshua Lederberg发现这两种机制以来,它们一直是遗传转导的唯一机制。图片来自Science, doi:10.1126/science.aat5867。 在一项新的研究中,来自新加坡国立大学、苏格兰格拉斯哥大学、苏格兰爱丁堡大学和西班牙埃雷拉红衣主教大学的研究人员发现了第三种遗传转导模式。这种称为侧向转导(lateral transduction,也称横向转导)的新模式似乎是迄今发现的最有效的转导手段,能够在极高的频率下将大片段细菌染色体(长几十万个碱基)在细菌之间转移。相关研究结果发表在2018年10月12日的Science期刊上,论文标题为“Genome hypermobility by lateral transduction”。论文通信作者为格拉斯哥大学的José R. Penadés和新加坡国立大学的John Chen。 当噬菌体感染细菌细胞时,它通常以两种方式之一进行繁殖:(1)溶菌周期(lytic cycle),在此期间,噬菌体繁殖并裂解细菌细胞,从而导致新的噬菌体颗粒释放;或者(2)溶原周期(lysogenic cycle),在此期间,噬菌体DNA整合到宿主基因组中并与宿主基因组一起复制。在溶原周期中,某些刺激能够触发噬菌体DNA将其自身从宿主基因组中切除下来,与蛋白一起包装成新的噬菌体颗粒,经历成熟后裂解宿主细胞。溶菌周期和溶原周期中释放出来的噬菌体随后能够感染其他的细菌并转移它们的DNA(除了噬菌体自身的DNA外,也包括来自宿主细胞的DNA)。 相比之下,在这项新的研究中,这些研究人员发现,当噬菌体在它们的生命周期后期延迟切除时,侧向转导就会发生。在这种情形下,噬菌体启动DNA复制,同时它们仍然是宿主基因组的一部分,这会导致多个整合在宿主基因组中的噬菌体基因组出现。随后DNA包装能够在一些噬菌体基因组上启动,从而导致细菌染色体DNA包装和转移到其他细菌,而其他的噬菌体基因组从宿主基因组中切除下来并导致正常的噬菌体成熟。 2. Science:开玩笑?细菌在不接触抗生素的情况下也会产生抗生素耐药性 doi:10.1126/science.aar7981 抗生素耐药性是一种全球性的公共健康威胁,据美国CDC数据显示,其在美国每年会引发超过2.3万人死亡,这与人群抗生素过度使用直接相关,但近日,一项刊登在国际杂志Science上的研究报告中,来自波士顿大学的科学家们通过研究发现,在并没有暴露在抗生素的条件下,细菌也会产生抗生素耐药性;文章中,研究者阐明了细菌所利用的短期生存技术与长期药物耐受性之间的关联。 在自然界中,细菌能够利用一种外排泵将抗生素和其它毒素排出细胞来保护细胞免受损伤,细胞产生外排泵非常昂贵,其会减缓细胞,破坏细胞膜并消耗大量能量,为了平衡抵御产生外排泵的潜在回报,细菌就必须多样化地使不同细胞表达外排泵来抵消其中的风险。研究者Dunlop说道,我们都知道,细菌细胞的外排泵对于抗生素耐药性的产生至关重要,拥有很多外排泵的细菌不仅能够固有表现出对抗生素较强的耐受性,而且其还会发生突变来获得高水平的抗生素耐药性,外排泵的表达或许就是细菌产生抗生素耐药性的基石。 研究者还发现,细菌更易于出现引发耐药性的突变,尽管细菌并未接触抗生素,为了检测这一论断,研究人员对细菌进行遗传工程化操作使其表达不同水平的外排泵,随后研究者来观察这些外排泵表达、DNA修复酶、MutS以及细菌细胞生长率之间的关系。研究者推测,如果细菌必须永久性地突变其DNA来产生抗生素耐药性的话,那么DNA修复蛋白或许就与这一过程存在关联,研究结果表明,细菌外排泵或与MutS蛋白的表达之间存在一种负相关关联,即细菌决定使用的外排泵越多,细胞中MutS蛋白的表达量越少。 随后研究者分析了细菌细胞生长和外排泵表达之间的关联,细胞生长减缓被认为会诱发细胞遗传物质更多的突变,而实际上外排泵表达的增加与细胞生长减缓直接相关,而并不仅仅是存在关联。研究者El Meouche说道,细菌具有耐药性并不仅仅是因为其表达了外排泵,而是细菌更易于通过上述关联来出现突变,我们阐明了细菌细胞中特定基因表达的变化如何引发后期遗传物质永久性的改变。 3. PNAS:科学家阐明细菌抗生素耐药性发生的新机制 doi:10.1073/pnas.1806005115 日前,一项刊登在国际杂志PNAS上的研究报告中,来自蒙大拿大学的科学家们通过研究深入揭示了病原菌对抗生素疗法产生耐药性的新机制。图片来源:Patrick Secor。研究者Patrick Secor教授表示,抗生素耐药性是目前全球所面临的公共健康难题,我们发现,从患者感染的肺部组织中取出在患者抗生素疗法过程中存活的细菌后,在实验室中利用相同的抗生素处理这些细菌,这些细菌竟然会发生死亡,那么其中的原因是什么呢?这项研究中我们就想通过研究阐明其中的原因。 机体气管粘液中的聚合物物理性地影响细菌所产生的压力反应会让细菌细胞产生轻度的DNA损伤,DNA损伤则会减缓细菌的生长;由于大部分抗生素都会靶向作用快速分裂的细菌细胞,其或许无法有效杀灭这些缓慢生长的细菌。研究者推测,粘膜聚合物开启细菌压力反应的机制或许能被用来开发新型靶向性疗法,从而治疗长期的细菌性感染。最后研究者Secor表示,未来我们希望能通过更为深入的研究来开发多种新型疗法治疗细菌性感染或增加当前抗生素作用的效力。 4. Cell:从结构上揭示转座子扩散抗生素耐药性机制 doi:10.1016/j.cell.2018.02.032 抗生素耐药性在细菌之间扩散的主要促进因素之一是转座子,也被称作跳跃DNA,即能够自主地在基因组中改变位置的遗传因子。当在细菌之间转移时,转座子能够携带抗生素耐药性基因。 在一项新的研究中,来自位于德国海德堡市的欧洲分子生物学实验室(EMBL)的Orsolya Barabas及其团队着重关注转座子及其分子结构。他们首次解析出一种转座酶-DNA复合物的晶体结构。作为一种转座子插入机器,这种复合物将转座子(包括它们携带的耐药性基因)插入到受体菌中。相关研究结果发表在2018年3月22日的Cell期刊上,论文标题为“Transposase-DNA Complex Structures Reveal Mechanisms for Conjugative Transposition of Antibiotic Resistance”。 Barabas团队发现作为转座子插入机器的主力,转座酶具有不同寻常的形状。这使得它在无活性状态下结合到转座子DNA上,从而阻止这种转座子遭受切割和破坏,直到它能够将抗生素耐药性基因导入到新的宿主基因组中。这种转座酶的特殊形状也迫使转座子DNA解螺旋和开放,从而允许这种转座子将它携带的抗生素耐药性基因插入到极其多样化的细菌基因组中的很多位点上。 5. Cell Rep:有意思!细菌或能通过“竞争者”来获取抗生素耐药性 doi:10.1016/j.celrep.2017.12.020 细菌不仅能对抗生素产生耐药性,还会从其竞争对手中获得耐药性,近日,一项刊登在国际杂志Cell Reports上的研究报告中,来自巴塞尔大学的研究人员通过研究发现,一些细菌能将毒性混合剂注射到其竞争者细胞中诱发其细胞裂解和死亡,随后通过整合释放的遗传物质(携带药物耐受性基因),这种捕食细菌的细胞就会获得抗生素耐药性。图片来源:www.ibtimes.co.uk。细菌耐多药的发生和扩散归咎于细菌的特殊技能,首先,细菌能利用VI型分泌系统(T6SS)注射毒性蛋白混合制剂(效应物)来抵御竞争者,第二,其还能够摄入和再利用竞争者细胞所释放的遗传物质,利用不动杆菌模式生物进行研究,研究人员鉴别出了5种不同的活性效应物,其中有些毒性蛋白能够以完全有效的方式来杀灭细菌竞争者,但并不会破坏细胞,其它毒性蛋白则能够损伤细胞膜,诱发细菌裂解死亡,释放细菌细胞内部的遗传物质。 “捕食者”细菌能够摄入释放的DNA片段,如果这些片段携带抗生素耐药基因的话,特殊的耐药性就会传递到细菌细胞中,因此抗生素或许并不总是有效,而耐药性的细菌可以在不受抗生素干扰的情况下不断繁殖生长。抗生素耐药菌是目前医院所面临的主要问题,通过与其它耐药菌的接触,这些细菌可能会产生对多种抗生素的耐药性,从而就会导致多重耐药性细菌的产生,以至于目前多种抗生素疗法变得失效。 6. Nat Commun:细菌抗生素耐药性研究又获重大突破! doi:10.1038/s41467-017-01405-7 当细菌进化出特殊的机制能应对治疗细菌感染的药物时,就预示着细菌抗生素耐药性的开始;近日,一篇刊登在国际杂志Nature Communications 上的题为“The multiple antibiotic resistance operon of enteric bacteria controls DNA repair and outer membrane integrity”的研究报告中,来自英国伯明翰大学的研究人员对大肠杆菌进行研究阐明了细菌保护自身抵御抗生素杀灭效果的新型分子机制。 大肠杆菌能诱发泌尿道和血流感染;这项研究中,在新型实验技术(包括全基因组DNA测序技术等)的帮助下,研究人员鉴别出了细菌保护自身抵御抗生素作用的新型机制或策略。研究者David Grainger教授说道,我们在大肠杆菌中发现了一种特殊基因或许参与了细菌对多种抗生素的耐药产生过程。 尽管这个基因研究者已经熟知很多年了,但目前研究人员还很难清楚阐明该基因到底是如何介导细菌对抗生素产生耐受性的。文章中研究者发现了该基因此前并未阐明的一种关键角色,即能够控制细菌对抗生素产生耐药性。研究者指出,我们发现了两种完全出乎意料的机制,细菌能利用这些机制来保护自身免于抗生素的作用,其中一种能保护细菌DNA免受氟喹诺酮抗生素的有害作用,另一种机制则能抑制名为强力霉素(doxycyline)的抗生素进入细菌细胞发挥作用。 7. Nat Commun:科学家们找到细菌产生抗生素耐药性的根源 doi:10.1038/ncomms15784 随着越来越多的细菌对抗生素产生了耐药性,寻找其耐药性产生的根源便成了当务之急。在来自丹麦的科学家们作出的一项最新研究中,他们找到了细菌产生抗生素耐药性的原因,而负责这一活性的基因与产生抗生素的基因本身竟然存在同源性!图片来自Nature Communications, doi:10.1038/ncomms15784。一些情况下,距离较近的细菌会相互吞噬彼此的遗传物质,主要以质粒传递的方式发生。随着相似的抗生素耐药性机制分别在格兰仕阴性菌以及放线菌中被发现,研究者们提出了"生产者假说",即放线菌是众多细菌产生抗性基因的源头。由此,研究者们进一步观察了一些病原菌中的抗性基因的相似性,他们发现很多不同类型的细菌共享一个相同的抗生素抗性系统。 事实上,革兰氏阴性菌与放线菌存在很多区别,因此难以想象基因在两者之间的跳跃。 此外,虽然两个基因存在清楚的相似性,但由于还是存在一定的区别,因此还不足以说明两个基因是通过横向传递获得的,而非演化而来的。通过对DNA序列进行检测,研究者们证实了这一猜想。 作者们称这一过程叫做"带回模型",即病原菌会利用其注射系统将DNA序列导入临近的放线菌中,之后来自放线菌的抗性基因则与注入序列发生整合。当放线菌死亡之后,遗传物质将会释放到环境中,而另外一个病原菌则会识别该序列并再次吸收为己用。 8. Science:重磅!细菌先休眠再快速进化产生抗生素耐药性 doi:10.1126/science.aaj2191 科学家们之前已证实细菌能够在抗生素存在下存活下来的一种方式是进化出一种“定时器(timer)”,从而确保它们在整个抗生素治疗期间保持休眠。但是当它们苏醒时,抗生素仍然会杀死它们,因此一种简单的解决方法是更长时间地持续开展抗生素治疗。耐甲氧西林金黄色葡萄球菌,图片来自NIH/NIAID。 如今,在一项新的研究中,来自以色列耶路撒冷希伯来大学的研究人员报道了细菌进化出耐药性的一种令人吃惊的替代性途径。在进化出这种休眠机制后,这些细菌群体随后能够比正常时快20倍地进化出耐药性。因此,继续服用抗生素并不会杀死这些细菌。相关研究结果于2017年2月9日在线发表在Science期刊上,论文标题为“Antibiotic tolerance facilitates the evolution of resistance”。 为了研究这个进化过程,由来自耶路撒冷希伯来大学拉卡物理学研究所的Nathalie Balaban教授和博士生Irit Levin-Reisman领导的一个研究团队在实验室可控条件下,让细菌群体接触日剂量的抗生素直到耐药性产生。通过在这个进化过程中追踪这些细菌,他们发现致死性的抗生素剂量产生暂时休眠的细菌,因此让它们免受几种靶向活跃生长的细菌的抗生素攻击。一旦细菌获得休眠的能力(也被称作“耐受性”),它们快速地获得耐药性突变,从而能够克服这种抗生素治疗。 因此,对大多数抗生素治疗而言,这些细菌首先进化出“休眠”能力,随后这种“休眠模式”不仅让它们暂时地免受这种抗生素的致死作用,而且实际上作为它们随后获得抗性因子的垫脚石。 这些结果表明在重复地接触高浓度抗生素的情形下,耐受性(tolerance)可能在细菌群体进化出耐药性中发挥着至关重要的作用。关键的因素是鉴于存在大量可能发生的突变,耐受性因而会快速地产生;耐药性和耐受性的组合效应导致在耐受性的基础上,产生部分耐药性突变。
  • 《法国科学家揭示细菌接触抗生素时产生耐药性的新机制》

    • 来源专题:生物安全知识资源中心 | 领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2019-06-03
    • 大肠杆菌能够合成抗药性蛋白,即便在旨在抑制细胞生长的抗生素存在下,也是如此。这是法国研究人员在一项新的研究中报道的研究结果。他们还发现了这种细菌是如何实现这一壮举的:一种保存完好的膜泵将抗生素从细胞中转运出去---只要足够长的时间就可以让细胞有时间接受来自相邻细胞的编码抗药性蛋白的DNA。相关研究结果发表在2019年5月24日的Science期刊上,论文标题为“Role of AcrAB-TolC multidrug efflux pump in drug-resistance acquisition by plasmid transfer”。 美国东新墨西哥大学微生物学家Manuel Varela(未参与这项新的研究)表示,“这是一个重要的发现。它将有助于解释细菌在遇到抗生素的毒性水平时如何设法传播抗菌素耐药性。” 这一发现让论文通讯作者、法国里昂大学细菌遗传学家Christian Lesterlin感到吃惊。他和他的同事们最初开始开发一种实时显微镜系统的项目,以便详细观察质粒转移---细菌细胞彼此分享DNA的过程。通过使用精心设计的荧光蛋白,一旦它们在新的宿主体内表达,他们就能够追踪质粒将编码它们的DNA从供体细胞转移到受体细菌以及所表达的荧光蛋白。 他们以大肠杆菌习惯性地分享抗生素耐药基因为例,观察到通过将编码TetA蛋白---一种让细胞对四环素产生耐药性的膜泵---的DNA从细胞中运出,从而将它传递出去。不久之后,他们观察到质粒DNA进入非耐药性细胞中,一段时间后,红色荧光点出现在受者细胞的膜上,这表明TetA蛋白发生表达,而且这些非耐药性细胞对四环素产生抗性。 这种抗生素通常用于家畜,但有时也用于治疗肺炎、呼吸道感染和其他疾病,通常会抑制缺乏TetA的细菌的生长,但是通过采用这种机制,许多细菌菌株正在变得具有耐药性。在最初的实验中四环素并不存在,所以为了了解这个过程是如何受到这种药物本身的影响,这些研究人员将细菌细胞暴露在高浓度的四环素中,并再次将它们置于显微镜下。 正如所料,这些研究人员观察到质粒DNA进入新的非耐药性细胞中。这是预料之中的,这是因为四环素不会阻碍这一过程。相反,它旨在阻止蛋白合成。令人吃惊的是,他们发现一些新的之前缺乏TetA蛋白的受者细胞中出现红色荧光,这些细胞以前没有TetA蛋白质:显然,尽管暴露于四环素中,它们仍然能够合成包括TetA在内的蛋白。Lesterlin回忆说:“我们花了很多很长时间才证实了这个结果,这非常违反直觉,我们很难确信它确实发生了。” 这些研究人员对这些细胞能够做到这一点进行了有根据的猜测:众所周知,许多细菌膜都含有一种称为AcrAB-TolC的多药外排泵,这种泵能够将很多抗生素从细胞中运出,他们认为,在四环素能够阻止蛋白合成和细胞生长之前,这种泵将它从细胞中运出。为了验证这一想法,他们设计了几种突变体,每种突变体在编码组成这种泵的不同蛋白的多个基因中的一个上发生突变。 他们发现这些突变体虽然从相邻细胞接受了携带TetA遗传密码的质粒,却不能合成TetA蛋白。在缺乏功能性外排泵的情形下,这些突变体不能将四环素从细胞中运出。随着抗生素水平在细胞内激增,它们不再能够合成蛋白,也就不能生长。 这些研究人员表示,当功能正常时,AcrAB-TolC泵将抗生素浓度保持在足够低的水平,为细菌细胞合成质粒DNA中编码的抗性蛋白赢取了时间。在这种情况下,它允许TetA蛋白产生,随后将更多的四环素从细胞运出。最终,细菌可以在抗生素的存在下具有耐药性。正如Lesterlin所说,“对细菌来说,这是比人类健康更好的消息。” 美国科罗拉多大学博尔德分校化学工程师和微生物学家Anushree Chatterjee(未参与这项新的研究)指出,“多药外排泵AcrAB-TolC在这个领域早已广为人所知。”不过,她说,事实上,它有助于细菌在接触抗生素的同时获得抗药性,这一消息是新闻。看到细菌能做这么多事情总是令人关注的。” 她说,这些发现具有广泛的影响,这是因为AcrAB-TolC在细菌中是非常保存的,而且这种其机制并不仅限于四环素。 Lesterlin和他的同事们证明这种泵还允许细菌在其他的抑制基因表达的抗生素---比如,抑制翻译的氯霉素和抑制转录的利福平---存在的情况下合成抗药性蛋白。 Lesterlin补充说,这种机制与所谓的不会杀死仅能抑制细菌生长的抑菌抗生素(bacteriostatic antibiotics)有关。他猜测这也将适用于在细菌产生耐药性之前直接将它们破坏的溶菌抗生素(bacteriolytic antibiotics)。 Chatterjee和Varela都对这项新研究进行了深入研究,其研究结果非常可靠,Varela对Lesterlin团队开发的技术印象特别深刻,这种技术可以在观察TetA蛋白合成的同时观察质粒DNA在细胞之间的转移。 Varela补充道,“这些作者还阐明了可作为开发新型抗菌试剂的新靶点的关键细菌机制。”比如,人们可能通过靶向AcrAB-TolC泵来制造抗生素---一些实验室正在研究这种方法。或者,人们可能能够靶向调节它产生的基因---这个角度吸引了Chatterjee。传统的抗生素设计方法在很大程度上依赖于靶向特定蛋白的小分子,而且对其中的许多小分子而言,细菌已经见过很多年了,最终选择了更多的耐药机制。 Chatterjee说,“我们需要研究非传统的途径。允许细胞应对这些应激情况的调节机制是什么?我认为靶向这些过程似乎,有助于开发从一开始就有望阻止耐药性产生的更智能疗法。”