《了解 RGBR 色选机:精度与效率的结合》

相关报告
  • 《Plessey的micro-LED生长技术在单个晶圆上结合了天然的蓝色和绿色Epi》

    • 来源专题:集成电路
    • 编译者:Lightfeng
    • 发布时间:2019-10-07
    • Plessey是一家面向增强和混合现实(AR / MR)显示应用且拥有最前Micro-LED技术的嵌入式技术开发商。Plessey表示已经进一步发展了其专有的硅氮化镓(GaN-on-Si)工艺,以实现同一晶片上的原生蓝光绿光基板发光层。 微型LED的潜力众所周知,但在推广到市场之前,仍然存在一些挑战。为了形成RGB micro-LED显示器,典型的方法是使用“拾取和放置”过程转移离散的R、G和B像素,或者使用原生蓝色LED作为光源,随后将颜色转换为红色和绿色。 Plessey最新增长方法是在同一晶片上同时创蓝色和绿色发光层。两种颜色的整体式形成大大简化了显示器的制造。绿色微型LED具有高效率和窄光谱宽度的优势,因此与高性能蓝色微型LED一起工作时,被称为出色的色域。该公司的新方法形成了具有高电流密度操作和长使用寿命的微型LED。天然蓝色和绿色微型LED在同一硅基板上的单片集旨解决以前的挑战。蓝色和绿色微型LED集成的另一个过程挑战是在第二结的生长过程中精确调整热预算,以防止蓝色有源区中的铟相分离。Plessey表示已经精确设计了热预算,以维持高亮度显示应用所需的高效率(IQE),低缺陷率和高电导率。 GaN micro-LED形成过程中的最终操作为去除氢原子的生长后处理,否则氢原子会损害p型层的导电性。第二个结的存在使从掩埋的器件结构中除去氢变得复杂,从而消除了标准的生长后活化处理的影响。 Plessey表示,我们已经克服挑战,创造了一种单片蓝色和绿色微型LED制造工艺,从而实现了非常可重复且稳定的二极管性能,这远远超出了典型二极管。
  • 《青岛能源所通过点线结合方式提高萜类化合物合成甲羟戊酸途径效率》

    • 来源专题:中国科学院文献情报先进能源知识资源中心 |领域情报网
    • 编译者:guokm
    • 发布时间:2018-08-02
    •   萜烯化合物,既包括大宗化学品异戊二烯又包括高能量密度燃料蒎烯等,在材料、能源和医药等领域具有极高的应用价值。以可再生糖为原料,利用绿色可持续的微生物代谢工程合成萜类物质是当前生物化工领域的研究重点,其中微生物可利用的外源甲羟戊酸(MVA)途径因其高效性和较好的可调控性是当前研究的热点。MVA途径从前体乙酰辅酶A到二甲基烯丙基焦磷酸(DMAPP)的合成路线涉及到7步反应和7个酶,如何突破限制该途径效率的点并平衡协调这7个酶的合成路线,从而提升代谢效率、平衡代谢流,同时防止中间产物对宿主细胞的毒性,是该途径的突破点和难题。   青岛能源所生物基材料组群张海波研究员带领的精细化学品研究组长期致力于萜烯化合物的生物合成,重点针对MVA途径的酶甲羟戊酸激酶(MK)、异戊烯焦磷酸异构酶(IDI)和萜烯合成酶等几个限制性点,同时统筹代谢流和中间产物毒性,平衡整条合成路线,在点线结合提升萜类化合物合成的MVA途径的效率上取得了新的突破。首先,针对MVA途径中的MK和IDI,通过不同物种来源筛选、随机突变和半理性设计进行定向进化和优化,获得了酶活性提高的MK(RSC Advances, 2018)和IDI (Microbial Cell Factories, 2018),从而减弱代谢流在MK和IDI位点的阻滞,最终提高萜烯化合物的产量(图1 MK的定向进化策略和效果图)。其次,统筹MVA途径涉及到的多步反应,对酶表达量的调控涉及的多个水平。该研究选取翻译水平上的调控方法,避免了RNA的不稳定和翻译后水平调控的菌体代谢负担问题,通过调整不同酶的核糖体结合位点(RBS)序列的手段,调控不同酶的表达,平衡整条代谢路线。对非限制酶羟甲基戊二酰辅酶A还原酶基因(MvaE)和甲羟戊酸焦磷酸脱羧酶基因(ERG19),调节其RBS序列,使其翻译起始效率(T.I.R.)降低,降低其蛋白表达量。对限制性酶MK和IDI,调节其RBS序列,使其T.I.R.提高,提高其蛋白表达量。通过对甲羟戊酸途径中的不同的酶的蛋白表达量的调控,实现了代谢流的平衡,最终提高了萜烯化合物的产量(图2 非限制酶和限制酶RBS序列优化策略)。   上述研究获得了中国科学院青年创新促进会、国家自然科学基金、泰山学者攀登计划等项目资助。(文/图 李美洁 陈海林 张海波)   相关成果发表:   [1] Chen H, Li M, Liu C, Zhang H, Xian M, Liu H: Enhancement of the catalytic activity of Isopentenyl diphosphate isomerase (IDI) from Saccharomyces cerevisiae through random and site-directed mutagenesis. Microbial Cell Factories 2018, 17(1). Doi: 10.1039/c8ra01783b   [2] Chen H, Liu C, Li M, Zhang H, Xian M, Liu H: Directed evolution of mevalonate kinase in Escherichia coli by random mutagenesis for improved lycopene. RSC Advances 2018, 8(27):15021-15028. Doi: 10.1186/s12934-018-0913-z   [3] Li M, Nian R, Xian M, Zhang H: Metabolic engineering for the production of isoprene and isopentenol by Escherichia coli. Applied Microbiology and Biotechnology 2018, Doi:10.1007/s00253-018-9200-5.   [4] Li M, Liu C, Chen H, Deng L, Zhang H, Nian R, Xian M: Biochemical characterization of isoprene synthase from Ipomoea batatas. Journal of Bioscience and Bioengineering 2018, Accepted.