《JEM:溶瘤病毒递送TGF-β抑制剂,让冷肿瘤转热,改善免疫治疗效果》

  • 来源专题:生物安全知识资源中心—领域情报网
  • 编译者: hujm
  • 发布时间:2023-08-21
  • 溶瘤病毒(Oncolytic Viruses,OVs)是一种有前途的实体瘤治疗方法。注射到肿瘤内后,溶瘤病毒能够选择性以癌细胞为目标,而不影响正常细胞,通过在癌细胞内复制,导致癌细胞裂解。此外,溶瘤病毒还能进一步刺激免疫系统,因此可以与其他癌症免疫疗法结合使用,例如免疫检查点抑制剂。

    溶瘤病毒疗法已成为一种有前途的癌症治疗方式。目前,已有4款溶瘤病毒疗法获批上市,通过肿瘤内注射治疗黑色素瘤、结直肠癌、恶性胶质瘤等多种癌症。

    近日,匹茨堡大学医学院的研究人员在 Journal of Experimenal Medicine 期刊发表了题为:An oncolytic virus–delivered TGFβ inhibitor overcomes the immunosuppressive tumor microenvironment 的研究论文。

    研究团队改造了一种溶瘤病毒痘苗病毒(Vaccinia Virus,VV),使其表达TGF-β抑制剂,其能够显著缩小侵袭性肿瘤,将其与PD-1抑制剂联用,67%的小鼠体内的肿瘤被完全清除,生存期也大大延长。这一结果为溶瘤病毒与免疫疗法相结合的临床试验铺平了道路。

    溶瘤病毒疗法是一种有前途的癌症治疗方式,然而,许多癌症患者的肿瘤对溶瘤病毒没有反应。免疫检查点抑制剂也是如此,它们只在被T细胞浸润的热肿瘤中发挥作用,对于缺少T细胞浸润的冷肿瘤则效果不佳。而溶瘤病毒可以帮助“加热”冷肿瘤,因此,溶瘤病毒与免疫检查点抑制剂等免疫疗法结合,具有巨大的癌症治疗潜力。

    在这项研究中,研究团队希望找到肿瘤抵抗溶瘤病毒的机制。研究团队首先构建了小鼠头颈鳞状细胞癌(HNSCC)模型MEER的αPD-1耐药变体,这些肿瘤细胞完全耐药αPD-1,但对溶瘤病毒痘苗病毒(Vaccinia Virus,VV)非常敏感,在单剂痘苗病毒(Vaccinia Virus,VV)注射后,这些肿瘤会消退。研究团队进一步构建了能够抗痘苗病毒(VV)的MEER细胞系。

    在将这两种类型的肿瘤细胞注射到小鼠体内并比较肿瘤生长的免疫学差异后,研究团队发现这些肿瘤细胞对痘苗病毒的抵抗力是由高水平的TGF-β信号蛋白所驱动的,这种蛋白通过抑制免疫环境来促进癌症生长。

    在这一发现的基础上,研究团队对痘苗病毒(VV)进行了基因工程改造,使其携带并表达一种编码TGF-βRII抑制剂(dnTGFβmm)的基因,从而阻断TGF-β细胞。

    TGF-β抑制剂对肿瘤细胞具有很强的杀伤效果,这已经在临床试验中得到了验证,但其通常是有毒的,因为它们通常是全身递送的。而是用溶瘤病毒递送TGF-β抑制剂的优势在于可以通过注射将其直接地送到肿瘤微环境中,因此非常有针对性,也具有更高的安全性。

    研究团队将改造的痘苗病毒注射到具有痘苗病毒抗性的头颈鳞状细胞癌小鼠体内时,肿瘤显著缩小,有大约50%的小鼠体内的肿瘤完全消失了,与接受不携带TGF-β抑制剂的痘苗病毒的对照组小鼠相比,存活率也大大提高。重要的是,这种治疗没有引起任何自身免疫或毒性相关的副作用。

    接下来,研究团队测试了改造的痘苗病毒是否能在对PD-1免疫检查点抑制剂抵抗的、具有高侵袭性的黑色素瘤中发挥类似作用。实验结果显示,未接受治疗、接受PD-1抑制剂治疗或对照痘苗病毒治疗的小鼠均在约24天内死亡,而接受改造的痘苗病毒治疗的小鼠中约有20%的体内的肿瘤完全被清除。将改造的痘苗病毒与PD-1抑制剂联合使用时,效果最为显著,67%的小鼠体内的肿瘤被完全清除,生存期也大大延长。

    据悉,研究团队已将这一改造的痘苗病毒授权给了Kalivir Immunotherapeutics公司,他们希望能够尽快将其作为免疫检查点抑制剂的辅助疗法进入人体临床试验,帮助那些对这些免疫疗法没有反应的癌症患者。

  • 原文来源:https://news.bioon.com/article/1392e8722953.html
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    • 来源专题:生物安全知识资源中心—领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2022-07-11
    • 自2015年10月首个溶瘤病毒疗法被FDA批准用于治疗黑色素瘤后[1],越来越多的临床研究证明,溶瘤病毒在癌症治疗中确具有一定作用,如在胶质母细胞瘤[2]及软组织肉瘤中[3]。   除了溶瘤病毒自身复制导致被感染的肿瘤细胞死亡之外,细胞死亡后的裂解产物还可吸引大量CD8+T细胞,从而诱导肿瘤特异性T细胞反应来杀伤肿瘤细胞[4]。   然而,研究人员发现,溶瘤病毒疗法会使肿瘤中PD-L1表达上调,从而削弱了抗肿瘤免疫反应[5]。因此,开发新的策略来最大限度地发挥溶瘤病毒疗法的潜力,一直是领域研究的热点。   近日,来自厦门大学的夏宁邵教授团队,成功构建了重组表达抗人源PD-1单链可变片段(hPD-1scFv)的溶瘤单纯疱疹病毒载体(YST-OVH),YST-OVH可明显增强小鼠肿瘤中CD8+T细胞的活性,在多种人源化PD-1小鼠肿瘤模型中均有明显抗肿瘤效果。   非人灵长类动物中的神经毒性和安全性评价显示,YST-OVH没有明显神经毒性,在非人灵长类动物中耐受性良好,具有非常好的临床转化潜力,相关研究成果发表在著名期刊《癌症免疫治疗杂志》[6]。 目前,溶瘤病毒疗法的效果受到两大因素的限制,一个因素是溶瘤病毒的扩散能力有限、对组织的穿透性不佳,另一个因素即是肿瘤微环境中的免疫抑制因子,它们导致免疫细胞处于失活状态,削弱了溶瘤病毒的抗肿瘤效果。   针对第一个因素,科学家利用具有肿瘤趋向性,且具有良好扩散及组织穿透能力的神经干细胞作为溶瘤病毒的载体,在动物模型及1期临床研究中取得良好效果,一定程度上解决了这个问题[7]。   而针对第二个因素,科学家们也尝试了多种方式来解决这一问题。   首先想到的解决办法,便是将溶瘤病毒疗法与免疫检查点抑制剂疗法相结合,且这一组合疗法在黑色素瘤、结肠癌中已被证实确实能够起到不错的效果,甚至对一些原本对免疫检查点抑制剂疗法不敏感的患者,也具有良好的疗效[8, 9]。   紧接着,科学家们自然而然地想到,可否直接让溶瘤病毒表达可激活免疫反应的蛋白,如细胞因子和免疫检查点特异性的抗体等,这在技术上是完全可行的。   “说干咱就干”。经改造后的可表达IL-7、IL-12[10]及抗PD-1(厦门大学夏宁邵教授团队[5])、抗TIGIT(南京大学魏继武教授团队[11])的溶瘤病毒相继问世。   厦门大学夏宁邵教授团队在其前期设计的重组表达抗鼠源PD-1单链可变片段(mPD-1scFv)的溶瘤单纯疱疹病毒载体(OVH-aMPD-1)的基础上(人和小鼠PD-1的氨基酸同源性约为61%),设计了首个抗人源PD-1单链可变片段(hPD-1scFv)的溶瘤单纯疱疹病毒载体(YST-OVH)。   感染YST-OVH的细胞可表达和分泌hPD-1scFv,与肿瘤微环境中淋巴细胞上的PD-1相结合,起到改善免疫应答的作用。本次研究中,夏宁邵教授团队在动物模型中对YST-OVH的抗肿瘤活性进行了验证,同时还报道了在非人灵长类动物中的可行性和安全性结果。   研究人员首先在体外检测了hPD-1scFv蛋白在YST-OVH感染细胞上清液中的表达,结果显示hPD-1scFv蛋白在感染后72小时达到高峰,且YST-OVH在细胞内的复制能力与亲本病毒(OVH)相似。 紧接着,研究人员检测了YST-OVH在体内及体外对肿瘤细胞的杀伤作用。   在体外实验中,YST-OVH和OVH对多种人类癌细胞和正常细胞的杀伤作用相似,且对肿瘤细胞的杀伤作用与病毒的感染剂量呈正比。 在体内实验中,研究人员在人肝癌细胞系(Hep3B)和人肺癌细胞系(A549)皮下移植小鼠(在这些小鼠中,YST-OVH产生的hPD-1scFv并不起作用)中评估YST-OVH的作用。结果显示,YST-OVH和OVH对肿瘤的抑制效果也类似。 为了评估YST-OVH中hPD-1scFv的作用,研究人员构建了表达人源PD-1的肝癌小鼠模型,并用其评估YST-OVH的治疗作用(肿瘤移植4天后开始,小鼠接受四次静脉注射病毒治疗)。结果显示,接受YST-OVH治疗的小鼠肿瘤(基本消失)显著小于OVH治疗组,生存期也更长,所有接受YST-OVH治疗的小鼠在86天的观察期内均存活下来,且肿瘤没有复发。   这表明YST-OVH中的hPD-1scFv起到效果。 对YST-OVH治疗的小鼠肿瘤组织进行质谱流式细胞术(CyTOF)检测发现,肿瘤组织中CD8+T细胞的浸润及活性均增加,CD8+T细胞耗竭减少。这与YST-OVH设计的初衷相一致。   此外,研究人员发现,YST-OVH治疗后的肿瘤组织中耗竭的CD8+T细胞上高表达CTLA-4和TIM-3这两个免疫抑制分子。同时,YST-OVH治疗对CTLA-4+Treg细胞(免疫抑制作用)比例无显著影响。这些结果提示,YST-OVH与适当的免疫检查点阻断治疗联合(如抗CTLA-4或抗TIM-3治疗),可逆转T细胞耗竭和阻断激活的Treg细胞,起到促进抗肿瘤免疫应答的效果。 结果也不出所料,YST-OVH和抗CTLA-4的联合治疗比两者单用的效果要更好。对小鼠肿瘤组织的RNA-seq测序结果显示,几种免疫相关信号通路,如获得性免疫反应、T细胞激活、淋巴细胞激活等,在联合治疗的肿瘤中显著富集。 最后,研究人员还在非人灵长类动物(恒河猴)中检测了YST-OVH疗法的神经毒性和安全性。最终的结果表明,YST-OVH对恒河猴无明显神经毒性,且耐受性良好。   总的来说,本研究构建了首个抗人源PD-1单链可变片段的溶瘤单纯疱疹病毒载体,且临床前研究显示,相比于单纯溶瘤病毒治疗,YST-OVH对肿瘤的抑制效果更好,且在非人灵长类动物中的良好安全性,使得该疗法具有十分强的临床转化潜力,期待该疗法的1期临床试验结果。   参考文献 1.Andtbacka RH, Kaufman HL, Collichio F, Amatruda T, Senzer N, Chesney J, Delman KA, Spitler LE, Puzanov I, Agarwala SS et al: Talimogene Laherparepvec Improves Durable Response Rate in Patients With Advanced Melanoma. J Clin Oncol 2015, 33(25):2780-2788. 2.Desjardins A, Gromeier M, Herndon JE, 2nd, Beaubier N, Bolognesi DP, Friedman AH, Friedman HS, McSherry F, Muscat AM, Nair S et al: Recurrent Glioblastoma Treated with Recombinant Poliovirus. N Engl J Med 2018, 379(2):150-161. 3.Monga V, Miller BJ, Tanas M, Boukhar S, Allen B, Anderson C, Stephens L, Hartwig S, Varga S, Houtman J et al: Intratumoral talimogene laherparepvec injection with concurrent preoperative radiation in patients with locally advanced soft-tissue sarcoma of the trunk and extremities: phase IB/II trial. J Immunother Cancer 2021, 9(7). 4.Bommareddy PK, Shettigar M, Kaufman HL: Integrating oncolytic viruses in combination cancer immunotherapy. Nat Rev Immunol 2018, 18(8):498-513. 5.Lin C, Ren W, Luo Y, Li S, Chang Y, Li L, Xiong D, Huang X, Xu Z, Yu Z et al: Intratumoral Delivery of a PD-1-Blocking scFv Encoded in Oncolytic HSV-1 Promotes Antitumor Immunity and Synergizes with TIGIT Blockade. Cancer Immunol Res 2020, 8(5):632-647. 6.Ju F, Luo Y, Lin C, Jia X, Xu Z, Tian R, Lin Y, Zhao M, Chang Y, Huang X et al: Oncolytic virus expressing PD-1 inhibitors activates a collaborative intratumoral immune response to control tumor and synergizes with CTLA-4 or TIM-3 blockade. J Immunother Cancer 2022, 10(6): e004762. 7.Fares J, Ahmed AU, Ulasov IV, Sonabend AM, Miska J, Lee-Chang C, Balyasnikova IV, Chandler JP, Portnow J, Tate MC et al: Neural stem cell delivery of an oncolytic adenovirus in newly diagnosed malignant glioma: a first-in-human, phase 1, dose-escalation trial. Lancet Oncol 2021, 22(8):1103-1114. 8.Ribas A, Dummer R, Puzanov I, VanderWalde A, Andtbacka RHI, Michielin O, Olszanski AJ, Malvehy J, Cebon J, Fernandez E et al: Oncolytic Virotherapy Promotes Intratumoral T Cell Infiltration and Improves Anti-PD-1 Immunotherapy. Cell 2017, 170(6):1109-1119.e1110. 9.Lee YS, Lee WS, Kim CW, Lee SJ, Yang H, Kong SJ, Ning J, Yang KM, Kang B, Kim WR et al: Oncolytic vaccinia virus reinvigorates peritoneal immunity and cooperates with immune checkpoint inhibitor to suppress peritoneal carcinomatosis in colon cancer. J Immunother Cancer 2020, 8(2). 10.Nakao S, Arai Y, Tasaki M, Yamashita M, Murakami R, Kawase T, Amino N, Nakatake M, Kurosaki H, Mori M et al: Intratumoral expression of IL-7 and IL-12 using an oncolytic virus increases systemic sensitivity to immune checkpoint blockade. Sci Transl Med 2020, 12(526). 11.Zuo S, Wei M, Xu T, Kong L, He B, Wang S, Wang S, Wu J, Dong J, Wei J: An engineered oncolytic vaccinia virus encoding a single-chain variable fragment against TIGIT induces effective antitumor immunity and synergizes with PD-1 or LAG-3 blockade. J Immunother Cancer 2021, 9(12).最后,研究人员还在非人灵长类动物(恒河猴)中检测了YST-OVH疗法的神经毒性和安全性。最终的结果表明,YST-OVH对恒河猴无明显神经毒性,且耐受性良好。 总的来说,本研究构建了首个抗人源PD-1单链可变片段的溶瘤单纯疱疹病毒载体,且临床前研究显示,相比于单纯溶瘤病毒治疗,YST-OVH对肿瘤的抑制效果更好,且在非人灵长类动物中的良好安全性,使得该疗法具有十分强的临床转化潜力,期待该疗法的1期临床试验结果。   参考文献 1.Andtbacka RH, Kaufman HL, Collichio F, Amatruda T, Senzer N, Chesney J, Delman KA, Spitler LE, Puzanov I, Agarwala SS et al: Talimogene Laherparepvec Improves Durable Response Rate in Patients With Advanced Melanoma. J Clin Oncol 2015, 33(25):2780-2788. 2.Desjardins A, Gromeier M, Herndon JE, 2nd, Beaubier N, Bolognesi DP, Friedman AH, Friedman HS, McSherry F, Muscat AM, Nair S et al: Recurrent Glioblastoma Treated with Recombinant Poliovirus. N Engl J Med 2018, 379(2):150-161. 3.Monga V, Miller BJ, Tanas M, Boukhar S, Allen B, Anderson C, Stephens L, Hartwig S, Varga S, Houtman J et al: Intratumoral talimogene laherparepvec injection with concurrent preoperative radiation in patients with locally advanced soft-tissue sarcoma of the trunk and extremities: phase IB/II trial. J Immunother Cancer 2021, 9(7). 4.Bommareddy PK, Shettigar M, Kaufman HL: Integrating oncolytic viruses in combination cancer immunotherapy. Nat Rev Immunol 2018, 18(8):498-513. 5.Lin C, Ren W, Luo Y, Li S, Chang Y, Li L, Xiong D, Huang X, Xu Z, Yu Z et al: Intratumoral Delivery of a PD-1-Blocking scFv Encoded in Oncolytic HSV-1 Promotes Antitumor Immunity and Synergizes with TIGIT Blockade. Cancer Immunol Res 2020, 8(5):632-647. 6.Ju F, Luo Y, Lin C, Jia X, Xu Z, Tian R, Lin Y, Zhao M, Chang Y, Huang X et al: Oncolytic virus expressing PD-1 inhibitors activates a collaborative intratumoral immune response to control tumor and synergizes with CTLA-4 or TIM-3 blockade. J Immunother Cancer 2022, 10(6): e004762. 7.Fares J, Ahmed AU, Ulasov IV, Sonabend AM, Miska J, Lee-Chang C, Balyasnikova IV, Chandler JP, Portnow J, Tate MC et al: Neural stem cell delivery of an oncolytic adenovirus in newly diagnosed malignant glioma: a first-in-human, phase 1, dose-escalation trial. Lancet Oncol 2021, 22(8):1103-1114. 8.Ribas A, Dummer R, Puzanov I, VanderWalde A, Andtbacka RHI, Michielin O, Olszanski AJ, Malvehy J, Cebon J, Fernandez E et al: Oncolytic Virotherapy Promotes Intratumoral T Cell Infiltration and Improves Anti-PD-1 Immunotherapy. Cell 2017, 170(6):1109-1119.e1110. 9.Lee YS, Lee WS, Kim CW, Lee SJ, Yang H, Kong SJ, Ning J, Yang KM, Kang B, Kim WR et al: Oncolytic vaccinia virus reinvigorates peritoneal immunity and cooperates with immune checkpoint inhibitor to suppress peritoneal carcinomatosis in colon cancer. J Immunother Cancer 2020, 8(2). 10.Nakao S, Arai Y, Tasaki M, Yamashita M, Murakami R, Kawase T, Amino N, Nakatake M, Kurosaki H, Mori M et al: Intratumoral expression of IL-7 and IL-12 using an oncolytic virus increases systemic sensitivity to immune checkpoint blockade. Sci Transl Med 2020, 12(526). 11.Zuo S, Wei M, Xu T, Kong L, He B, Wang S, Wang S, Wu J, Dong J, Wei J: An engineered oncolytic vaccinia virus encoding a single-chain variable fragment against TIGIT induces effective antitumor immunity and synergizes with PD-1 or LAG-3 blockade. J Immunother Cancer 2021, 9(12).
  • 《Small Methods | 胆固醇代谢调控纳米粒改善肿瘤光动力-免疫治疗效果》

    • 来源专题:生物安全知识资源中心—领域情报网
    • 编译者:hujm
    • 发布时间:2022-11-01
    • 光动力疗法(PDT)介导的免疫激活作用使其兼具肿瘤免疫治疗的效果。然而,PDT免疫疗效的发挥受到肿瘤浸润的细胞毒性T细胞(CTLs)功能和状态的影响。改善肿瘤免疫抑制性微环境,有效激活并增强CTLs的功能,有望提高PDT的抗肿瘤免疫治疗效果。胆固醇代谢途径干预CTLs和肿瘤细胞的功能,通过调控胆固醇代谢,有望增强CTLs功能,提高抗肿瘤疗效。   2022年10月28日,上海药物所李亚平团队在Small Methods上发表了题为“Blocking cholesterol metabolism with tumor-penetrable nanovesicles to improve photodynamic cancer immunotherapy”的研究成果。该研究开发了一种基质金属蛋白酶(MMP-2)响应的促渗透纳米粒,通过促进药物瘤内渗透,同步调控CTLs和肿瘤细胞的胆固醇代谢行为,改善CTLs功能,协同增强光动力-免疫治疗抗肿瘤效果。  该研究制备了脂质纳米囊泡共包载MMP-2酶敏促渗肽修饰的光敏剂PPa和胆固醇酯化酶抑制剂阿伐麦布,在进行PDT的同时干预胆固醇代谢以提高疗效。该递药系统具有以下特点:(1)纳米粒在血液循环中保持稳定,通过EPR效应被动蓄积至肿瘤部位,在肿瘤高表达的MMP-2作用下,促渗肽iRGD从纳米粒中响应释放,促进阿伐麦布在瘤内的深部渗透;(2)被肿瘤细胞摄取后,PPa介导的PDT诱导肿瘤细胞发生免疫原性细胞死亡(ICD),进而激活抗肿瘤免疫应答;(3)阿伐麦布被释放后可以同时抑制肿瘤浸润性 CD8+ T细胞和肿瘤细胞的胆固醇代谢,恢复T细胞的功能,抑制肿瘤细胞迁移,使肿瘤细胞处于有效的免疫监视,协同PDT激活的免疫应答杀伤肿瘤。与单独PDT相比,基于该递药系统的联合治疗策略在黑色素瘤模型中展现出更强的抗肿瘤效果。该研究提出了通过调控胆固醇代谢通路提高光动力免疫治疗效果的新思路。  上海药物所李亚平研究员、王当歌副研究员为本文的共同通讯作者,博士生刘晓琛为本文第一作者。该研究得到了国家自然科学基金、中国科学院青促会和上海市科学技术委员会等项目的资助。   全文链接:https://onlinelibrary.wiley.com/doi/epdf/10.1002/smtd.202200898